Липидные модули в составе специализированных пищевых продуктов и диет

Научное издание / монография

Выпущено ООО Издательский дом «БИБЛИО-ГЛОБУС»

Эта книга проиндексирована РИНЦ, см. https://elibrary.ru/item.asp?id=29212937

Книга доступна в ЭБС ЛАНЬ: https://e.lanbook.com/book/165612

Издание осуществлено при финансовой поддержке Российского научного фонда, грант 14-16–00055

Цитировать книгу:
Кочеткова А.А., Коденцова В.М., Бессонов В.В., Мазо В.К, Саркисян В.А., Глазкова И.В., Воробьева И.С., Рисник Д.В., Макаренко М.А., Сидорова Ю.С., Ведищева Ю.В., Зорин С.Н. Липидные модули в составе специализированных пищевых продуктов и диет. М.:Библио-Глобус, 2016. – 260 с. – ISBN: 978-5-9909278-0-3 – doi: 10.18334/9785990927803

Книга в каталоге РГБ: https://search.rsl.ru/ru/record/01008757503

В издательстве открыта вакансия ответственного редактора научного журнала с возможностью удаленной работы
Подробнее...

Рецензенты:
Нечаев А.П. - доктор технических наук, заслуженный деятель науки РФ
Шатнюк Л.Н. - доктор технических наук

Аннотация:
В монографии, посвященной теоретическим основам создания жировых продуктов для здорового питания, обобщены современные сведения о химии липидов и сопутствующих им веществ, функциональной роли нутриентов липидной природы в питании человека, задачах и способах модификации составов жировых продуктов; описаны гигиенические риски, связанные с технологиями их получения. Отличительной особенностью монографии является рассмотрение актуальных вопросов, связанных с созданием специализированных модулей в качестве системы доставки биологически активных веществ. На примере специализированных липидных модулей рассмотрен алгоритм создания новых видов жировых компонентов и продуктов, предназначенных для улучшения обеспеченности организма полиненасыщенными жирными кислотами семейства омега-3, который включает анализ жирового компонента фактического рациона, выявление целевых групп населения, нуждающихся в модификации пищевого рациона, оценку возможных рисков в результате употребления разработанного модуля. Отдельная глава монографии посвящена вопросам использования интеллектуального анализа данных в оценке стабильности и эффективности липидных модулей. Монография рассчитана на широкий круг читателей, в первую очередь, научных сотрудников, работающих в различных областях пищевой технологии, химии пищевых продуктов, биохимии, нутрициологии, диетологии, физиологии, а также аспирантов и студентов соответствующих специальностей.

Ключевые слова: базовый липидный модуль, омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты, окислительные процессы, витамин Е, астаксантин, витамин D, обеспеченность микронутриентами, интеллектуальный анализ данных, физиолого-биохимическая оценка in vivo, неинфекционные алиментарно-зависимые заболевания, специализированные пищевые продукты, техническое регулирование, диетотерапия

Источники:

1. Бекетова Н.А., Вржесинская О.А., Коденцова В.М. и др. Влияние содержания жира в рационе на обеспеченность крыс витаминами. // Вопр. питания. – 2012. – Т. 81, № 3. – C.52–57. 2. Бекетова Н.А., Вржесинская О.А., Коденцова В.М. и др. Коррекция полигиповитаминоза у крыс различными дозами витаминов на фоне обогащения рациона полиненасыщенными жирными кислотами семейства ω-3 // Вопр. питания. – 2013. – Т. 82, № 4. – С. 39–47. 3. Бекетова Н.А., Кошелева О.В., Переверзева О.Г., и др. Витаминный статус спортсменов, занимающихся пулевой стрельбой и зимними видами спорта // Вопр. питания. – 2014. – Т.83, № 3 Приложение. Матер. XV Всероссийского Конгресса диетологов и нутрициологов с международным участием «Здоровое питание: от фундаментальных исследований к инновационным технологиям» (2–4 июня 2014 г., М.) – С. 136–137. 4. Бекетова Н.А., Вржесинская О.А., Шаранова Н.Э. и др. Влияние жирового компонента рациона крыс и дополнительно введенного в него коэнзима Q10 на обеспеченность животных витаминами. // Вопр. питания. – 2010. – Т.79, № 6. – С. 30–37. 5. Блохина Л.В., Кондакова Н.М., Погожева А.В., Батурин А.К. Роль изучения фактического питания в системе многоуров


47
невой диагностики нарушений пищевого статуса пациентов с ожирением. // Вопросы питания. – 2009. – № 5. – С. 35–39. 6. Вржесинская О.А., Бекетова Н.А., Коденцова В.М. и др. Влияние обогащения витаминдефицитного рациона крыс полиненасыщенными жирными кислотами семейства ω-3 на биомаркеры витаминного и антиоксидантного статуса // Вопр. питания. – 2013. – Т. 82, № 1. – С. 45–52. 7. Вржесинская О.А., Бекетова Н.А., Кошелева О.В. и др. Влияние жирового компонента рациона крыс и коэнзима Q10 на обеспеченность животных витаминами-антиоксидантами в хроническом эксперименте. // Вопр. питания. – 2012. – Т.81., № 6. – С. 41–46. // Вопр. питания. – 2012. – Т.81, № 6. – С. 41-46. 8. Вржесинская О.А., Коденцова В.М., Бурбина Е.В. и др. Пищевая ценность рационов детей дошкольного и младшего школьного возраста. // Вопр. дет. диетологии. – 2003. – Т.1, № 2. – С. 5–8. 9. Гладышев М.И. Незаменимые полиненасыщенные жирные кислоты и их пищевые источники для человека // Журнал Сибирского федерального университета. Биология. – 2012. Т. 4, № 5. – С. 352–386. 10. Гладышев М.И., Лепская Е.В., Сущик Н.Н. Различия жирнокислотного состава покатной молоди и вернувшихся из моря взрослых особей нерки. // Доклады АН. – 2010. – Т. 430. – С. 548–551. 11. Коденцова В.М., Вржесинская О.А. Витаминный статус человека при хронических неинфекционных заболеваниях. // Вопросы питания. – 2003. – № 4. – С. 3–8. 12. Коденцова В.М., Вржесинская О.А., Спиричев В.Б. Изменение обеспеченности витаминами взрослого населения Российской Федерации за период 1987–2009 гг. (к 40-летию лаборатории витаминов и минеральных веществ НИИ питания РАМН). // Вопр. питания. – 2010. – Т.79, № 3. – С. 68–72.


48
13. Коденцова В.М., Вржесинская О.А., Сокольников А.А. Витаминизация пищевых продуктов массового потребления: история и перспективы. // Вопр. питания. – 2012. – Т.81, № 5. – С. 66–78. 14. Коденцова В.М, Гмошинская М.В., Вржесинская О.А. Витаминно-минеральные комплексы для беременных и кормящих женщин: обоснование состава и доз // Репродуктивное здоровье детей и подростков. – 2015. – № 3. – С. 73–96. 15. Коденцова В.М., Светикова А.А., Вржесинская О.А. Распространенность алиментарных факторов риска развития остеопороза среди пациентов с хроническими неифекционными заболеваниями. // Вопросы диетологии. – 2011. – Т.1, № 1. – С. 7–11. 16. Коденцова В.М., Кочеткова А.А., Смирнова Е.А., Саркисян В.А., Бессонов В.В. Состав жирового компонента рациона и обеспеченность организма жирорастворимыми витаминами // Вопр. питания. – 2014. – Т. 83, № 6. – С. 4–17. 17. Кравченко Л.В., Аксенов И.В., Авреньева Л.И. и др. Влияние полиненасыщенных жирных кислот ω-3 на некоторые показатели антиоксидантного потенциала крыс // Вопр. питания. – 2013. – Т.82, № 2. – С. 4–9. 18. Кравченко Л.В., Морозов С.В., Бекетова Н.А. и др. Антиоксидантный статус крыс, получавших разное количество ликопина. // Бюл. эксперим. биологии и медицины. – 2003. – Т.135, № 4. – С. 414–418. 19. Кулакова С.Н., Батурина В.А., Шаранова Н.Э. и др. Влияние коэнзима КоQ10 на апоптоз, процессы свободнорадикального окисления, протеомный пул микросомальной и цитозольной фракций гепатоцитов при потреблении рационов с различным жировым компонентом. // Вопросы питания. – 2012. –Т.81, № 5. – С. 51–59. 20. Ланкин В.З., Капелько В.И., Рууге Э.К. и др. Коэнзим Q: физиологическая функция и перспективы использования в ком


49
плексной терапии заболеваний сердечно-сосудистой системы. Пособие для врачей. – М.: Медпрактика-М. –2008. –22 с. 21. Лапик И.А, Сокольников А.А., Шарафетдинов Х.Х. и др. Оценка эффективности диетотерапии с включением витаминноминерального комплекса у больных сахарным диабетом 2 типа // Вопр. питания – 2014. – Т 83, № 3. – С. 74–81. 22. Латышев Н.А., Касьянов С.П., Блинов Ю.Г. Алкил-глицериновые эфиры морских организмов: структура, распределение и биологическая активность. // Известия ТИНРО. – 2012. – Т.169. – С. 261–277с. 23. Лобанова Л.П., Агбалян Е.В., Буганов А.А. Обеспеченность микронутриентами пришлого населения Крайнего Севера // Вопросы питания. – 2007. – № 5. – С. 51–54. 24. Перова Н.В. Ω–3 полиненасыщенные жирные кислоты в кардиологии // Кардиоваскулярная терапия и профилактика.– 2005. – № 4. – С. 101–107. 25. Плотникова О.А., Шарафетдинов Х.Х., Зыкина В.В. и др. Клинико-метаболические показатели и витаминная обеспеченность больных сахарным диабетом типа 2 при включении в диету витаминно-минерального комплекса. // Вопр. питания. – 2010. – Т.79, № 2. – С. 54–59. 26. Погожева А.В. Омега–3 полиненасыщенные жирные кислоты в кардиологии // Клиническая диетология. – 2004. – Т.1, № 2. – С. 17–29. 27. Сазонова О.В., Батурин А.К. Питание и пищевой статус работников умственного труда с низкой физической активностью // Вопросы питания. 2010. – Т. 79. № 3. – С. 46–50. 28. Сафронова А.М., Батурин А.К., Кешабянц Э.Э. и др. Изменения в питании населения России в 1990–2002 гг. // Уровень жизни населения регионов России. –2004. – № 11. – С. 38–60.


50
29. Светикова А.А. Алиментарные факторы риска и диетотерапия остеопении при некоторых хронических заболеваниях. // Автореф. …канд дисс. М. –2008. – 25с. 30. Тутельян В.А. О нормах физиологических потребностей в энергии и пищевых веществах для различных групп населения Российской Федерации. // Вопросы питания. – 2009. –Т.78, № 1. –С. 4–15. 31. Тутельян В.А., Погожева А.В., Румянцева О.И. и др. Влияние биологически активных добавок на антиоксидантный статус и обеспеченность витаминами у больных гипертонической и ишемической болезнью сердца. // Вопр. питания. – 2001. – № 1. – С. 12–14. 32. Химический состав пищевых продуктов./ Под ред. Скурихина И.М., Волгарева М.Н. – М., Агропромиздат, 1987. – 224 с. 33. Ходырев В.Н, Коденцова В.М., Вржесинская О.А. и др. Обеспеченность больных остеопорозом и остеопенией витаминами и кальцием. Оценка по потреблению и концентрации в плазме крови. // Тез. IX Всероссийский конгресс диетологов и нутрициологов «Питание и здоровье». – М., 2007. – С. 87. 34. Шилина Н.М. Современные представления о роли полиненасыщенных жирных кислот в питании женщин и детей: новые аспекты // Вопросы питания. – 2010. –Т. 79, № 5. –С. 15–23. 35. Экспериментальная витаминология (справочное руководство) / Под ред. Островского Ю.М. – Минск: Наука и техника, 1979. – 552 с. 36. Accinni R., Rosina M., Bamonti F. et al. Effects of combined dietary supplementation on oxidative and inflammatory status in dyslipidemic subjects // Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis. – 2006. – Vol.16, N2. – P. 121–127. 37. Ahlgren G., Blomqvist P., Boberg M, et al. Fatty acid content of the dorsal muscle – an indicator of fat quality in freshwater fish. // J Fish Biol.. – 1994. – Vol.45. – Р. 131–157.


51
38. Alexander D.W., McGuire S.O., Cassity N.A., et al. Fish oils lower rat plasma and hepatic, but not immune cell alpha-tocopherol concentration // J. Nutr. –1995. –Vol.125, N10. – P. 2640–2649. 39. Bodas R., Prieto N., López-Campos O., et al. // Res. Vet. Sci.- 2010. (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20800247 40. Breivik H. Long-chain omega-3 specialty oils. // The oily Press Lipid Library. – 2007. – Vol. 21. – 299p. 41. Broadhurst C.L., Wang Y., Crawford M.A. et al. Brainspecific lipids from marine, lacustrine, or terrestrial food resources: potential impact on early African Homo sapiens. // Comparative Biochemistry and Physiology. – 2002. – B 131. – Р. 653–673. 42. Carvajal J.A. Docosahexaenoic Acid Supplementation Early in Pregnancy May Prevent Deep Placentation Disorders // Biomed Res Int. 2014. 526895. http://dx.doi.org/10.1155/2014/526895 43. Calzada C., Colas R., Guillot N. et al. Subgram daily supplementation with docosahexaenoic acid protects low-density lipoproteins from oxidation in healthy men // Atherosclerosis. – 2010. – Vol.208, №2. – P. 467–472. 44. Cho S.H., Choi Y.S. Lipid peroxidation and antioxidant status is affected by different vitamin E levels when feeding fish oil // Lipids. – 1994. – Vol. 29, № 1. – Р. 47–52. 45. Chuang L.T., Bulbul U., Wen P.C., et al. Fatty acid composition of 12 fish species from the Black Sea. // J Food Science. – 2012. – Vol.77. – Р. C512–C518. 46. Costa E.N., Lacerda E.C.Q., Santos S.M., Carilan S., Santos M. S.; Franco M. Silva R.R; Simionato J.I. Action of successive heat treatments in bovine milk fatty acids // J. Braz. Chem. Soc. – 2011. – Vol. 22. – № 11. – Р. 2115–2120.


52
47. Davis B.C, Kris-Etherton P.M. Achieving optimal essential fatty acid status in vegetarians: current knowledge and practical implications. // Am J Clin Nutr. – 2003. – Vol. 78 (suppl). – Р. 640S–646S. 48. Eder K., Flader D., Hirche F., Brandsch C. Excess dietary vitamin E lowers the activities of antioxidative enzymes in erythrocytes of rats fed salmon oil // J. Nutr. – 2002. – Vol.132, №11. – P. 3400–3404. 49. Egert S., Somoza V., Kannenberg F. et al. Influence of three rapeseed oil-rich diets, fortified with alpha-linolenic acid, eicosapentaenoic acid or docosahexaenoic acid on the composition and oxidizability of low-density lipoproteins: results of a controlled study in healthy volunteers // Eur. J. Clin. Nutr. –2007. – Vol.61, №3. – P. 314–325. (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ pubmed/16969378 от 08.09.10). 50. Farwer S.R., der Boer B.C., Haddeman E., et al. The vitamin E nutritional status of rats fed on diets high in fish oil, linseed oil or sunflower seed oil. // Br. J. Nutr. – 1994. – Vol.72, №1. – P. 127–145. 51. Foulon T., Richard M.J., Payen N. et al. Effects of fish oil fatty acids on plasma lipids and lipoproteins and oxidant-antioxidant imbalance in healthy subjects // Scand. J. Clin. Lab. Invest. – 1999. – Vol.59, №4. – P. 239–248. 52. Frikke-Schmidt H, Tveden-Nyborg P, Birck M.M. et al. High dietary fat and cholesterol exacerbates chronic vitamin C deficiency in guinea pigs. // Br J Nutr. – 2011. – Vol.105, № 1. – Р. 54–61. 53. Gladyshev M.I., Sushchik N.N., Gubanenko G.A. et al. Effect of boiling and frying on the content of essential polyunsaturated fatty acids in muscle tissue of four fish species // . Food Chemistry. – 2007. – Vol.101. – Р. 1694–1700. 54. Gladyshev M.I., Sushchik N.N., Gubanenko G.A. et al. Effect of way of cooking on content of essential polyunsaturated fatty acids in muscle tissue of humpback salmon (Oncorhynchus gorbuscha) // . Food Chemistry. – 2006. – Vol.96. – Р. 446–451.


53
55. Gladyshev M.I., Sushchik N.N., Makhutova O.N. et al. Content of essential polyunsaturated fatty acids in three canned fish species. // Int J Food Science Nutr. – 2009. – Vol.60. – Р. 224–230. 56. Gonzalez M.J. Fish oil, lipid peroxidation and mammary tumor growth // J. Am. Coll. Nutr. –1995. – Vol.14, №4. – P. 325–335. 57. Grau A., Guardiola F., Grimpa S. et al. Oxidative stability of dark chicken meat through frozen storage: influence of dietary fat and alpha-tocopherol and ascorbic acid supplementation // Poult. Sci. – 2001. – Vol.80, №11. – P. 1630–1642. 58. Gredilla R, Barja G. Minireview: the role of oxidative stress in relation to caloric restriction and longevity. // Endocrinology. – 2005. – Vol.146, № 9. – Р. 3713–3717. 59. Gronowska-Senger A., Kubicka K. and Dabrowski A. // Acta Aliment. Pol. – 1978. – Vol. 4. – P. 297–303. 60. Guillot N., Caillet E., Laville M. et al. Increasing intakes of the long-chain omega-3 docosahexaenoic acid: effects on platelet functions and redox status in healthy men // FASEB J. – 2009. – Vol.23, N9. – P. 2909–2916. 61. Haddad E., Blankenship J.W., Register U.D. Short term effect of a low fat diet on plasma retinol and alpha- tocopherol and red cell alpha-tocopherol levels in hyperlipidemic men // Am. J. Clin. Nutr. – 1985. – Vol. 41, № 3. – Р. 599–604. 62. Harris W.S., Mozaffarian D., Lefevre M. et al. Towards establishing dietary reference intakes for eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids. // J Nutr. – 2009. – Vol.139 – 804S–819S. 63. Heissenberger M., Watzke J., Kainz M.J. Effect of nutrition on fatty acid profiles of riverine, lacustrine, and aquaculture-raised salmonids of pre-alpine habitats. // Hydrobiologia. – 2010. – Vol. 650. – Р. 243–254.


54
64. Hooper L., Summerbell C. D., Thompson R., et al. Reduced or modified dietary fat for preventing cardiovascular disease // SmithCochrane Database Syst Rev. 2011; (7): CD002137. 65. Husvéth F., Manilla H.A., Gaál T., et al. Effects of saturated and unsaturated fats with vitamin E supplementation on the antioxidant status of broiler chicken tissues // Acta Vet. Hung. – 2000. – Vol.48, №1. – P. 69–79. 66. Huynh M.D., Kitts D.D. Evaluating nutritional quality of pacific fish species from fatty acid signatures. // Food Chem. – 2009. – Vol.114. – Р. 912–918. 67. Hyun D.H., Emerson S.S., Jo D.G. et al. Calorie restriction upregulates the plasma membrane redox system in brain cells and suppresses oxidative stress during aging. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 2006 . – Vol. 103, № 52. – Р. 19908–19912. 68. Ibrahim W., Lee U.S., Yeh C.C et al. Oxidative stress and antioxidant status in mouse liver: effects of dietary lipid, vitamin E and iron // J. Nutr. – 1997. – Vol.127, №7. – P. 1401–1406. 69. Imhoff-Kunsch B., Stein A.D., Martorell R., Parra-Cabrera S., Romieu I., Ramakrishnan U. // Prenatal Docosahexaenoic Acid Supplementation and Infant Morbidity: Randomized Controlled Trial Pediatrics. 2011. 128, № 3. Р. e505-e512. 70. Keim S.A., Daniels J.L., Siega-Riz A.M., Herring A.H., Dole N., Scheidt P.C. Breastfeeding and long-chain polyunsaturated fatty acid intake in the first 4 post-natal months and infant cognitive development: an observational study // Matern Child Nutr. 2012. 8, № 4. Р. 471–482. 71. Kikugawa K., Yasuhara Y., Ando K. et al. Protective effect of supplementation of fish oil with high n-3 polyunsaturated fatty acids against oxidative stress-induced DNA damage of rat liver in vivo // J. Agric. Food Chem. – 2003. – Vol.51, N20. – P. 6073–6079. (http://www. ncbi.nlm. nih.gov/ pubmed/13129319).


55
72. Kitson A.P., Patterson A.C., Izadi H., Stark K.D. Pan-frying salmon in an eicosapentaenoic acid (EPA) and docosahexaenoic acid (DHA) enriched margarine prevents EPA and DHA loss. // Food Chemistry. – 2009. – Vol.114. – Р. 927–932. 73. Kris-Etherton P.M., Grieger J.A., Etherton T.D. Dietary reference intakes for DHA and EPA. // Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. – 2009. – Vol.81. – Р. 99–104. 74. Kris-Etherton P.M., Harris W.S., Appel L.J. Fish consumption, fish oil, omega-3 fatty acids, and cardiovascular disease. // Circulation . – 2002. – Vol.106. – Р. 2747–2757. 75. Kwetegyeka J., Mpango G., Grahl-Nielsen O. Variation in fatty acid composition in Muscle and heart tissues among species and populations of tropical fish in lakes Victoria and Kyoga. // Lipids. – 2008. – Vol.43. – Р. 1017–1029. 76. Lii C.K., Ou C.C., Liu K.L. et al. Suppression of altered hepatic foci development by a high fish oil diet compared with a high corn oil diet in rats // Nutr. Cancer. – 2000. –Vol.38, №1. – P. 50–59. 77. López D., Möller M., Denicola A. et al. Long-chain n-3 polyunsaturated fatty acid from fish oil modulates aortic nitric oxide and tocopherol status in the rat // Br. J. Nutr. – 2008. –Vol.100, №4. – P.767–775. 78. Mahecha L., Dannenberger D., Nuernberg K. et al. Relationship between lipid peroxidation and antioxidant status in the muscle of German Holstein bulls Fed n-3 and n-6 PUFA-enriched diets // J. Agric. Food Chem. – 2010. – Vol.58, № 14. – Р. 8407–8413. 79. Markhus M.W., Skotheim S., Graff I.E., Frøyland L., Braarud H.C., Stormark K.M., Malde M.K. Low Omega-3 Index in Pregnancy Is a Possible Biological Risk Factor for Postpartum Depression // PLoS One. 2013. 8, № 7. Р. e67617. 80. McNamara R.K., Vannest J.J., Valentine C.J. Role of perinatal long-chain omega-3 fatty acids in cortical circuit maturation: Mechanisms


56
and implications for psychopathology // World J Psychiatry. 2015. 5, № 1. Р. 15–34. 81. Morse N.L. Benefits of Docosahexaenoic Acid, Folic Acid, Vitamin D and Iodine on Foetal and Infant Brain Development and Function Following Maternal Supplementation during Pregnancy and Lactation // Nutrients. 2012. 4, № 7. Р. 799–840. 82. National Nutrient Database for Standard Reference Release 27 Software v.2.0b (2014) США http://ndb.nal.usda.gov/ndb/. 83. Nitta H., Kinoyama M., Watanabe A., et al. Effects of nutritional supplementation with antioxidant vitamins and minerals and fish oil on antioxidant status and psychosocial stress in smokers: an open trial // Clin. Exp. Med. – 2007. – Vol. 7, № 4. – Р. 179–183. 84. Phang M., Lazarus S., Wood L.G., et al. Diet and thrombosis risk: nutrients for preventionof thrombotic disease. Seminars in Thrombosis and Hemostasis. – 2011. – Vol. 37. – Р. 199–208. 85. Pietrantoni E., Del Chierico F., Rigon G., Vernocchi P., Salvatori G., Manco M., Signore F., Putignani L. Docosahexaenoic Acid Supplementation during Pregnancy: A Potential Tool to Prevent Membrane Rupture and Preterm Labor // Int J Mol Sci. 2014. 15, № 5. Р. 8024–8036. 86. Plourde M., Cunnane S.C. Extremely limited synthesis of long chain polyunsaturates in adults: implications for their dietary essentiality and use as supplements. // Applied Physiology, Nutr. Metab. – 2007. – Vol.32. – Р. 619–634. 87. Ramakrishnan U., Imhoff-Kunsch B., DiGirolamo A.M. Role of docosahexaenoic acid in maternal and child mental health // Am J Clin Nutr. 2009. 89, № 3. Р. 958S–962S. 88. Reis L.C., Hibbeln J.R. Cultural symbolism of fish and the psychotropic properties ofomega-3 fatty acids // Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. –2006. – Vol. 75. – Р.227–236.


57
89. Rodrıguez-Alcala L. M., Fontecha J. Hot Topic: Fatty Acid and Conjugated Linoleic Acid (CLA) Isomer Composition of Commercial CLA-Fortified Dairy Products: Evaluation After Processing and Storage // J. Dairy Sci. – 2007. – Vol. 90. – Р.2083–2090. 90. Rogers L.K., Valentine C.J., Keim S.A. DHA supplementation: current implications in pregnancy and childhood // Pharmacol Res. 2013. 70, № 1. Р. 13–19. 91. Rogozin D.Y., Pulyayevskaya M.V., Zuev I.V. et al. Growth, diet and fatty acid composition of Gibel carp Carassius gibelio in Lake Shira, a brackish water body in Southern Siberia. // J Siberian Fed.l University. Biology. – 2011. – Vol. 4. – Р. 86–103. 92. Rymer C., Givens D.I. Effects of vitamin E and fish oil inclusion in broiler diets on meat fatty acid composition and on the flavour of a composite sample of breast meat // J. Sci. Food Agric. – 2010. – Vol.90, №10. – Р. 1628–1633. 93. Saldanha L.G., Salem Jr. N., Brenna J.T. Workshop on DHA as a required nutrient: Overview. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. – 2009. – Vol.81. – Р. 233–236. 94. Scislowski V., Bauchart D., Gruffat D. et al. Effects of dietary n-6 or n-3 polyunsaturated fatty acids protected or not against ruminal hydrogenation on plasma lipids and their susceptibility to peroxidation in fattening steers // J. Anim. Sci. – 2005. – Vol. 83, N 9. – P. 2162–2174. 95. SanGiovanni J.P., Chew E.Y. The role of omega-3 long-chain polyunsaturated fatty acids in health and disease of the retina // Progress in Retinal and Eye Research. – 2005. – Vol.24. –Р. 87–138. 96. Sies H. Total antioxidant capacity: appraisal of a concept // J. Nutr. –2007. – Vol.137, N 6. – P. 1493–95. 97. Simopoulos A.P. Human requirement for n-3 polyunsaturated fatty acids. // Poultry Science. – 2000. – Vol. 79. – Р. 961–970.


58
98. Tres A., Bou R., Codony R., Guardiola F. Influence of different dietary doses of n-3- or n-6-rich vegetable fats and alpha-tocopheryl acetate supplementation on raw and cooked rabbit meat composition and oxidative stability // J. Agric. Food Chem. – 2008. – Vol.56, №16. – P. 7243–7253. 99. Umegaki K., Hashimoto M., Yamasaki H. et al. Docosahexaenoic acid supplementation-increased oxidative damage in bone marrow DNA in aged rats and its relation to antioxidant vitamins // Free Radic. Res. – 2001. – Vol.34, №4. – P. 427–435. 100. Valk E.E., Hornstra G. Relationship between vitamin E requirement and polyunsaturated fatty acid intake in man: a review // Int. J. Vitam. Nutr. Res. –2000. – Vol.70, №2. – P. 31–42. 101. Villaverde C., Baucells M.D., Manzanilla E.G. et al. High levels of dietary unsaturated fat decrease alpha-tocopherol content of whole body, liver, and plasma of chickens without variations in intestinal apparent absorption // Poult Sci. – 2008. – Vol.87, №3. – P. 497–505. 102. Wall R., Ross R.P., Fitzgerald G.F., et al. Fatty acids from fish: the anti-inflammatory potential of long-chain omega-3 fatty acids. // Nutr. Rev. 68: 280–289. 103. Walther B., Karl J. P., Booth S.L., Boyaval P. Menaquinones, Bacteria, and the Food Supply: The Relevance of Dairy and Fermented Food Products to Vitamin K Requirements Adv Nutr. 2013 Jul; 4(4): 463–473. doi: 10.3945/an.113.003855. 104. Wu W.H., Lu S.C., Wang T.F. et al. Effects of docosahexaenoic acid supplementation on blood lipids, estrogen metabolism, and in vivo oxidative stress in postmenopausal vegetarian women // Eur. J. Clin. Nutr. – 2006. – Vol.60, №3 – P.386–392. (http://cat.inist.fr/?aModele=afficheN&cpsidt= 17547627).


59
105. Yoshida E., Fukuwatari T., Ohtsubo M. et al. High-fat diet lowers the nutritional status indicators of pantothenic acid in weaning rats. // Biosci. Biotechnol. Biochem. – 2010. – Vol.74, № 8. – Р. 691–593. 106. Zhao J.-P., Levy E., Fraser W.D., Julien P., Delvin E., Montoudis A., Spahis S., Garofalo C., Nuyt A.M., Luo Z.-C. Circulating Docosahexaenoic Acid Levels Are Associated with Fetal Insulin Sensitivity // PLoS One. 2014. 9, № 1. Р. e85054. 107. Захарова И. Н., Творогова Т. М., Громова О. А., Евсеева Е.А., Лазарева С. И., Майкова И. Д. и др. Недостаточность витамина D у подростков: результаты круглогодичного скрининга в Москве. Педиатрическаяфармакология. 2015; 12 (5): 528–31. 108. List G.R.Trans fat replacements: A global overview.- Lipid Technology. – 2014. –Vol. 26, N 6. – Р.131. 109. Gill P.E, Wijk K. Case study of a healthy eating intervention for Swedish lorry drivers. // Health Educ Res . –2004. – Vol. 19. – Р. 306–315. 110. Stender S., Astrup A., Dyerberg J. A trans European Union difference in the decline in trans fatty acids in popular foods: a market basket investigation // BMJ Open. – 2012. – Vol. 2: e000859 doi: 10. 1136/ bmjopen-2012-000859. 111. Raederstorff D., Wyss A., Calder P.C., Weber P., Eggersdorfer M.Vitamin E function and requirements in relation to PUFA Br J Nutr. 2015; 114(8): 1113–1122. 112. Itariu B. K., Zeyda M., Leitner L., Marculescu R., Stulnig T.M.Treatment with n-3 Polyunsaturated Fatty Acids Overcomes the Inverse Association of Vitamin D Deficiency with Inflammation in Severely Obese Patients: A Randomized Controlled Trial PLoS One. 2013; 8(1): e54634. 113. Вржесинская О.А., Бекетова Н.А., Кошелева О.В., Карагодина З.В., Переверзева О.Г., Жминченко В.М., Коденцова В.М., Васильев А.В. Влияние жирового компонента рациона крыс и коэнзима Q10


60
на обеспеченность животных витаминами-антиоксидантами в хроническом эксперименте. // Вопр. питания. – 2012. – Т.81., № 6. – С. 41–46. 114. Бекетова Н.А., Вржесинская О.А., Шаранова Н.Э., Кулакова С.Н., Кошелева О.Г., Сото С.Х., Карагодина З.В., Переверзева О.Г., В.М. Жминченко, Коденцова В.М., Васильев А.В. Влияние жирового компонента рациона крыс и дополнительно введенного в него коэнзима Q10 на обеспеченность животных витаминами. // Вопр. питания. – 2010. – Т.79, № 6. – С. 30–37. 115. Landrier J.F., Marcotorchino J., Tourniaire F. Lipophilic Micronutrients and Adipose Tissue Biology Nutrients. 2012; 4(11): 1622–1649. 116. Светикова А.А., Вржесинская О.А., Коденцова В.М., Бекетова Н.А., Переверзева О.Г., Погожева А.В., Каганов Б.С. Витаминный статус и минеральная плотность костной ткани у больных с ожирением и сердечно-сосудистой патологией. // Вопр. питания. – 2008. – Т.77, № 3. – С. 39–44. 117. Бекетова Н.А., Коденцова В.М., Шилина Н.М., Гмошинская М.В., Переверзева О.Г., Абрамова Т.В., Георгиева О.В. Влияние приема витаминно-минеральных комплексов на биомаркеры антиоксидантного статуса беременных женщин // Вопросы детской диетологии. 2015; 13(5):32–37. 118. Hossein-nezhad A., Holick M.F. 2013 Vitamin D for Health: A Global Perspective. Mayo Clin Proc. 88(7): 720–755. doi: 10.1016/j.mayocp.2013.05.011. 119. Горбачев Д.О., Бекетова Н.А., Коденцова В.М., Кошелева О.В., Сокольников А.А., Сазонова О.В., Гильмиярова Ф.Н., Гусякова О.А. Оценка витаминного статуса работников Самарской ТЭЦ по данным о поступлении витаминов с пищей и их уровню в крови // Вопр. питания. – 2016. – Т.85, № 3. – С. 71–81. 120. Торшин И.Ю., Лиманова О.А., Сардарян И.С., Громова О.А., Малявская С.И., Гришина Т.Р., Галустян А.Н., Волков А.Ю., Калаче


61
ва А.Г., Громов А.Н., Рудаков К.В. Обеспеченность витамином D детей и подростков 7–14 лет и взаимосвязь дефицита витамина D с нарушениями здоровья детей: анализ крупномасштабной выборки пациентов посредством интеллектуального анализа данных // Педиатрия. Журналим. Г.Н. Сперанского, 2015. – Т. 94. № 2. – С. 175–184. 121. Wagner C.L, Taylor S.N, Johnson D.D, Hollis B.W The role of vitamin D in pregnancy and lactation: emerging concepts // Womens Health (Lond Engl). 2012. 8, № 3. Р. 323–340. 122. Коденцова В. М., Рисник Д. В. Эколого-географическая и пищевая составляющие обеспеченности населения витамином D // Экология. Экономика. Информатика. Сборник статей: в 2-х т. Т. 1: Системный анализ и моделирование экономических и экологических систем. – Т. 1. – Издательство ЮНЦ РАН Ростов-на-Дону, 2016. – С. 486–498.


1. ТР ТС 021/2011 «О безопасности пищевой продукции». 2. ТР ТС 024/2011 «Технический регламент на масложировую продукцию». 3. «Перечень стандартов, содержащих правила и методы исследований (испытаний) и измерений, в том числе правила отбора образцов, необходимые для применения и исполнения требований технического регламента таможенного союза «О безопасности пищевой продукции» (ТР ТС 021/2011) и осуществления оценки (подтверждения) соответствия продукции».


94
4. «Перечень стандартов, содержащих правила и методы исследований (испытаний) и измерений, в том числе правила отбора образцов, необходимые для применения и исполнения требований технического регламента таможенного союза «Технический регламент на масложировую продукцию» (ТР ТС 024/2011) и осуществления оценки (подтверждения) соответствия продукции»). 5. ГОСТ Р 51487-99 «Масла растительные и жиры животные. Метод определения перекисного числа». 6. Official Methods and Recommended Practices of the American Oil Chemists’ Society, 4th edn., edited by D. Firestone, American Oil Chemists’ Society, Champaign, 1997, Method Cd 8–53. 7. Shantha N.C., Decker E.A. Rapid, Sensitive, Iron-Based Spectrophotometric Methods for Determination of Peroxide Values of Food Lipids. // J. AOAC Int. 77:421–424 (1994). 8. Hara S., Totani Y. A Highly Sensitive Method for the Microdetermination of Lipid Hydroperoxides by Potentiometry. // J. Am. Oil Chem. Soc. 65:1948–1950 (1988). 9. Hamm D.L., Hammond E.G., Parvanah V., Snyder H.E. The Determination of Peroxides by the Stamm Method. // Ibid. 42:920-922 (1965). 10. Dong J., Ma K., van de Voort F.R., Ismail A.A. Stoichiometric Determination of Hydroperoxides in Oils by Fourier Transform NearInfrared Spectroscopy. // J. AOAC Int. 80:345–352 (1997). 11. Crowe T. D., White P.J. Adaptation of the AOCS Official Method for Measuring Hydroperoxides from Small-Scale Oil Samples. // J.AOCS, Vol. 78, no. 12 (2001) 1267 – 1269. 12. Liang P. J., Wang H., Chen C. Y., et al. The use of Fourier transform infrared (FT-IR) spectroscopy for quantification of adulteration in virgin walnut oil. // Journal of Spectroscopy, vol. 2013, Article ID 305604, 6 pages, 2013.


95
13. Sinelli N., Cosio M. S., Gigliotti C., Casiraghi E. Preliminary study on application of mid infrared spectroscopy for the evaluation of the virgin olive oil ‘freshness’ // Analytica Chimica Acta, vol. 598, № 1, pp. 128–134, 2007. 14. Maggio R. M., Kaufman T. S., Carlo M. D., et al. Monitoring of fatty acid composition in virgin olive oil by Fourier transformed infrared spectroscopy coupled with partial least squares // Food Chemistry, vol. 114, № 4, pp. 1549–1554, 2009. 15. Guillén M.D., Cabo N. Fourier transform infrared spectra data versus peroxide and anisidine values to determine oxidative stability of edible oils. // Food Chemistry, vol. 77, № 4, pp. 503–510, 2002. 16. Bendini A., Cerretani L., Di Virgilio F., Belloni P., BonoliCarbognin M., Lercker G. Preliminary evaluation of the application of the ftir spectroscopy to control the geographic origin and quality of virgin olive oils. // Journal of Food Quality, vol. 30, № 4, pp. 424–437, 2007. 17. Muik B., Lendl B., Molina-Diaz A., Valcarcel M., AyoraCañada M. J. Two-dimensional correlation spectroscopy and multivariate curve resolution for the study of lipid oxidation in edible oils monitored by FTIR and FT-Raman spectroscopy. // Analytica Chimica Acta, vol. 593, № 1, pp. 54–67, 2007. 18. Muik B., Lendl B., Molina-Diaz A., Valcarcel M., AyoraCañada M. J. «Two-dimensional correlation spectroscopy and multivariate curve resolution for the study of lipid oxidation in edible oils monitored by FTIR and FT-Raman spectroscopy» // Analytica Chimica Acta, vol. 593, № 1, pp. 54–67, 2007. 19. Yu X. Z., Du S. K, Li Z. X., Zhang J. Y. Study on detection of peroxide value in edible oils using FTIR spectral reconstitution technique. // Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology, vol. 11, pp. 169–175, 2011.


96
20. Wang L. Q., Zhang L. Y., Zhu X. C. Near-infrared spectroscopic analysis of peroxide value of soybean oil. // Food Science, vol. 31, pp. 205–207, 2010. 21. Liang P., Wang H., Chen C., Ge F., Liu D., Li S., Han B., Xiong X., Zhao S. Application of Fourier Transform Infrared Spectroscopy for the Oxidation and Peroxide Value Evaluation in Virgin Walnut Oil. // Journal of SpectroscopyVol. 2013 (2013). 22. Guillen M. D., Cabo N. Some of the most significant changes in the Fourier transform infrared spectra of edible oils under oxidative conditions. // Journal of the Science of Food and Agriculture, vol. 80, p. 2028–2036, 2000. 23. Rodriguez-Saona L. E., Allendorf M. E. Use of FTIR for rapid authentication and detection of adulteration of food. // Annual Review of Food Science and Technology, vol. 2, № 17, pp. 1–17, 2011. 24. Christy A. A., Egeberg P. K., Østensen E. T. Simultaneous quantitative determination of isolated trans fatty acids and conjugated linoleic acids in oils and fats by chemometric analysis of the infrared profiles. // Vibrational Spectroscopy, vol. 33, № 1–2, pp. 37–48, 2003. 25. Moros J., Garrigues S., de la Guardia M. Vibrational spectroscopy provides a green tool for multi-component analysis. // Trends in Analytical Chemistry, vol. 29, № 7, pp. 578–591, 2010. 26. Guillén M. D., Cabo N. Characterization of edible oils and lard by fourier transform infrared spectroscopy: relationships between composition and frequency of concrete bands in the fingerprint region. // Journal of the American Oil Chemists' Society, vol. 74, № 10, pp. 1281–1286, 1997. 27. Li S. G., Xue W. T., Zhang H. Research progress in analysis methods of peroxide value in edible oils. // Cereals and Oils, vol. 7, pp. 35–38, 2007. 28. Vlachos N., Skopelitis Y., Psaroudaki M., Konstantinidou V., Chatzilazarou A., Tegou E. Applications of Fourier transform-infrared


97
spectroscopy to edible oils. // Analytica Chimica Acta, vol. 573–574, pp. 459–465, 2006. 29. Kanner J. Dietary advanced lipid oxidation end products are risk factors to human health. // Mol Nutr Food Res. 2007; 51(9):1094-101.). 30. Zdzislaw Z., Sikorski E., Kolakowska A. Chemical, Biological, and Functional Aspects of Food Lipids, Second Edition, CRC Press. 512 P. 31. Pignitter M., Somoza V. Critical Evaluation of Methods for the Measurement of Oxidative Rancidity in Vegetable Oils. // Journal of Food and Drug Analysis, Vol. 20, № 4, 2012, P. 772–777. 32. Bailey’s Industrial Oil and Fat Products, Sixth Edition, Edited by Fereidoon Shahidi. Copyright # 2005 John Wiley & Sons, Inc. 33. Adeleye G. S., Nwozor C. M. Effects of Dietary Advanced Lipid Oxidation End-products on Colitis Healing in Albino Rats. // Journal of Environmental Issues and Agriculture in Developing Countries, Vol. 5, № 1, 2013. 34. Cohn, J. Oxidized fat in the diet postprandial lipaemia and cardiovascular disease. // Curr. Opin. Lipidol(2003)13, 19–24. 35. Gorelik S., Lipidot T., Shaham I.,Granit R. Lipid peroxidation and coupled vitamin oxidation in simulated and human gastric fluid inhibited by dietary polyphenols: health implications. // Journ. Agric. Food Chem. (2005). 53, 3397–3402. 36. Hager H. H., Medany A. E., Eter E. E., Arafa M. // Eur. J. Pharmacol., (2007) 554: 69–77. 37. Kanner J. Oxidative processes in meat and meat products: Quality implications. // Meat Sc i (1994).36, 169-189. 38. Kanner J. Dietary advanced lipid oxidation end products are risk factors to human health. // Mol. Nutr. Food Res. (2007) 51, 1094 – 1101.


98
39. Kubow S. Routes of formation and toxic consequences of lipid oxidation products in foods. // Free Radic Biol. Med., (1992) 12, 63–81. 40. Lemaire-Ewing S.; Prunet C.; Montange T.; Vejux, A. Comparison of the cytotoxic, prooxidant and pro-inflammatory characteristics of different oxysterols. // Cell. Biol. Toxicol (2005) 21, 97 – 114. 41. Romano C., Famiani A., Gallizzi R., Comito D., Ferrau V., Rossi P.. Indeterminate colitis: a distinctive clinical pattern of inflammatory bowel disease in children. // Pediatrics (2008)122 (6), 1278–81. 42. Frankel E N. Chemistry of autoxidation: mechanism, products and flavor significance. In: Min D.B., Smouse T.H., editors. Flavor chemistry of fats and oils. Champaign, Ill.: American Oil Chemists’ Society. P 1–34. 1985. 43. Choe E., Min D.B. Mechanisms and Factors for Edible Oil Oxidation. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. // CRFSFS , vol. 5, № 4, pp. 169–186, 2006. 44. Mensink R.P., Katan M.B. Effect of dietary trans fatty acids on high-density and low density lipoprotein cholesterol levels in healthy subjects // New Eng. J. Med. – 1990. – V.323. – P. 439–445. 45. Zock P., Katan M.B. Hydrohenation alternatives: effects of trans fatty acids and stearic acid versus linoleic acid on serum lipids and lipoproteins in humans // J. Lipid Res. – 1992. – V.33. – P. 399–410. 46. 3–monochloro-1,2-propanediol, iarc monographs – 101, Available online 22 May 2012. Web 23 May 2012. 47. Barocelli E., Corradi A., Mutti A., Petronini P.G. Scientific Report submitted to EFSA: Comparison between 3-MCPD and its palmitic esters in a 90-day toxicological study, University of Parma, Parma, Italy (2011), Web 6 Dec 2011. 48. Committee on Carcinogenicity of Chemicals in Food, Consumer Products and the Environment, Statement on Carcinogenicity


99
of 1,3-dichloropropan-2-ol (1,3-DCP) and 2,3- dichloropropan-1-ol (2,3DCP) (June 2004). Web. 21 Sept 2010. 49. Committee on Mutagenicity of Chemicals in Food, Consumer Products and the Environment, Statement on the Mutagenicity of 2,3Dichloropropan-1-ol (2,3-DCP) (May 2004). Web. 21 Sept 2010. 50. Abu-El-Haj S., Bogusz M.J., Ibrahim Z., Hassan H., Al Tufaila M. Rapid and Simple Determination of Chloropropanols (3-MCPD and 1,3-DCP) in Food Products using Isotope Dilution GC-MS. // Food Control 18:81-90 (2007). Web. 21 Sept 2010. 51. Bai L., Sun M.J., An J.G., Liu D.Q., Chen T.K., Kord A.S., Enhancing the Detection Sensitivity of Trace Analysis of Pharmaceutical Genotoxic Impurities by Chemical Derivatization and Coordination Ion Spray-Mass Spectrometry. // Journal of Chromatography A 1217:302-306 (2010). Web 7 Feb 2011. 52. Becalski A., Feng S.-Y., Lau B.-P., Zhao T. Glycidyl fatty acid esters in food by LC-MS/MS: method development. // Anal Bioanal Chem 2012 Mar 30. Web 11 April 2012. 53. Ibargoitia M.L., Sopelana P., Guillén M.D.1H Nuclear Magnetic Resonance monitoring of the degradation of margarines of varied compositions when heated to high temperature // Food Chemistry. – Vol.165. – 2014. – p. 119–128. 54. Pauli G. F., Gödecke T., Jaki B.U., Lanki D. C. Quantitative 1H NMR: Development and Potential of an Analytical Method – an Update // J Nat Prod. – Vol. 75(4). – p. 834–851. 55. Cordella C.B.Y. et al. A multiway chemometric and kinetic study for evaluating the thermal stability of edible oils by 1H NMR analysis: Comparison of methods // Talanta. – Vol.88. – 2012. – p. 358– 368. 56. Serra А., Buccioni A., Rodriguez-Estrada M.T., Conte G., Cappucci A., Mele M. Fatty acid composition, oxidation status and volatile organ


100
ic compounds in “Colonnata” lard from Large White or Cinta Senese pigs as affected by curing time // Meat Science. – Vol. 97. – 2014. – p. 504–512. 57. Morales A., Marmesat S., Dobarganes M. C., MárquezRuiz Gl.,Velasco J. Evaporative light scattering detector in normal-phase high-performance liquid chromatography determination of FAME oxidation products // Journal of Chromatography A. – Vol.1254. – 2012. – p. 62–70. 58. Bogdan J., Dlugogorski Z., Kennedy E.M., Mackie J.C. Identification and Quantitation of Volatile Organic Compounds from Oxidation of Linseed Oil // Ind. Eng. Chem. Res. – Vol. 51. – 2012. – p. 5645−5652. 59. Oliver-Pozo C., Aparicio-Ruiz R., Romero I, GarcíaGonzález., D. L. Analysis of Volatile Markers for Virgin Olive Oil Aroma Defects by SPME-GC/FID. Possible Sources of Incorrect Data // J Agric Food Chem. – Vol. 63 (48). – 2015. – p. 10477–83. 60. Wardencki W., Michulec M, Curyło. J. A review of theoretical and practical aspects of solid-phase microextraction in food analysis // International Journal of Food Science and Technology. – Vol. 39. – 2004. – p. 703–717. 61. Wójcicki K, Khmelinskii I, Sikorski M, Sikorska E. Near and mid infrared spectroscopy and multivariate data analysis in studies of oxidation of edible oils. // Food Chem.. – Vol. 187. – 2015. – p. 416–423. 62. Krichene C., Salvador MD, Fregapane G. Stability of Virgin Olive Oil Phenolic Compounds during Long-Term Storage (18 Months) at Temperatures of 5–50 // J Agric Food Chem.. – Vol. 63(30). – 2015. – p. 6779–86. 63. Correia A.C., Dubreucq E., Ferreira-Dias S., Lecomte J. Rapid quantification of polar compounds in thermo-oxidized oils by HPTLCdensitometry // Eur J Lipid Sci Technol. – Vol. 117. – 2015. – p. 311–9.


101
64. Picariello G, Paduano A, Sacchi R, Addeo F. MALDI-TOF mass spectrometry profiling of polar and non-polar fractions in heated vegetable oils // J Agric Food Chem. – Vol. 57. – 2009. – р. 5391–400. 65. Christy AA. Evidence in the formation of conjugated linoleic acids from thermally induced 9t12t linoleic acid: a study by gas chromatography and infrared spectroscopy // Chem Phys Lipids. – Vol. 161. – 2009a. – p. 86–94. 66. Zhang Q., Qin W., Li M., Shen Q., Saleh Ah. S.M. Application of Chromatographic Techniques in the Detection and Identification of Constituents Formed during Food Frying: A Review // Comprehensive Reviews in Food Scienceand Food Safety. – Vol.14. – 2015. – p. 601–633.
3.6. Список литературы к главе 3
1. Ипатова Л.Г. и др.. Жировые продукты для здорового питания. Современный взгляд. Москва, 2009. – 396 p. 2. Нечаев А., Кочеткова А. Растительные масла функционального назначения // Масложировая промышленность, 2005. 3. Кочеткова А. Функциональные продукты в концепции здорового питания // Пищевая промышленность, 1999.


138
4. Кочеткова А., Колеснов А. Современная теория позитивного питания и функциональные продукты // Пищевая промышленность, 1999. 5. Лисицын А. Биологические особенности сортов рапса и физиологическая ценность жмыхов и шротов // Масложировая промышленность, 2007. 6. Лисицын А. Современные требования к масложировым продуктам // Масложировая индустрия материалы ХІ …. 2011. 7. Лисицын А. Стабильность масел с различным содержанием олеиновой кислоты при нагреве. // Масложировая промышленность, 2010. 8. Стеценко А. et al. О растительно-жировых спредах // Масложировая промышленность, 2006. 9. Лисицын А., Григорьева В. Окислительная деструкция растительных масел под воздействием высоких температур // Масложировая промышленность, 2007. 10. Лисицын А. Некоторые факторы, определяющие стабильность растительных масел к окислению/А.Н. Лисицин, Т.Б. Алымова // Масложировая промышленность, 2005. 11. Лисицын А., Григорьев В. Масложировые технологии: теория, практика, перспективы // Масложировая промышленность, 2002. 12. Григорьева В., Лисицын А. Смеси растительных масел – биологически полноценные продукты // Масложировая промышленность, 2005. 13. Григорьева В., Лисицын А. Факторы, определяющие биологическую полноценность жировых продуктов // Масложировая промышленность, 2002. 14. Wanasundara P., Shahidi F. Antioxidants: science, technology, and applications // Bailey’s Ind. Oil Fat …. 2005.


139
15. Shahidi F., Zhong Y. Lipid oxidation and improving the oxidative stability. // Chem. Soc. Rev. 2010. Vol. 39, № 11. P. 4067–4079. 16. Zhong Y., Lall S.P., Shahidi F. Effects of oxidized dietary oil and vitamin E supplementation on lipid profile and oxidation of muscle and liver of juvenile atlantic cod (Gadus morhua). // J. Agric. Food Chem. 2007. Vol. 55, № 15. P. 6379–6386. 17. Shahidi F. Antioxidants in food and food antioxidants // Nahrung (Germany). 2000. 18. Shahidi F., Wanasundara U.N. Methods for Measuring Oxidative Rancidity in Fats and Oils // Food Lipids: Chemistry, Nutrition, and Biotechnology. 2002. P. 387–403. 19. Gunstone F.D. Vegetable Oils // Bailey’s Industrial Oil and Fat Products / ed. Shahidi F. Hoboken, NJ, USA: John Wiley & Sons, Inc., 2005. 20. Schaich K.M. Lipid Oxidation: Theoretical Aspects // Bailey’s Industrial Oil and Fat Products / ed. Shahidi F. Hoboken, NJ, USA: John Wiley & Sons, Inc., 2005. 21. Dey S.S., Dora K.C. Suitability of chitosan as cryoprotectant on croaker fish (Johnius gangeticus) surimi during frozen storage // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 6. P. 699–705. 22. Sun Q., Shen H., Luo Y. Antioxidant activity of hydrolysates and peptide fractions derived from porcine hemoglobin // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 1. P. 53–60. 23. Sharma K.D. et al. Antioxidant capacity, polyphenolics and pigments of broccoli-cheese powder blends // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 4. P. 510–514. 24. Nwanguma B.C. et al. Toxicity of oxidized fats II: Tissue levels of lipid peroxides in rats fed a thermally oxidized corn oil diet // Food Chem. Toxicol. 1999. Vol. 37, № 4. P. 413–416.


140
25. EFSA. Scientific Opinion on Fish Oil for Human Consumption, 2010. Vol. 8, № 10. 1-48 p. 26. Sachindra N.M. et al. Radical scavenging and singlet oxygen quenching activity of extracts from Indian seaweeds // J. Food Sci. Technol. 2010. Vol. 47, № 1. P. 94–99. 27. Swapna H.C. et al. Lipid classes and fatty acid profile of selected Indian fresh water fishes // J. Food Sci. Technol. 2010. Vol. 47, № 4. P. 394–400. 28. Verma A.K., Banerjee R. Dietary fibre as functional ingredient in meat products: A novel approach for healthy living – A review // J. Food Sci. Technol. 2010. Vol. 47, № 3. P. 247–257. 29. Warhadpande R.M. et al. Effect of incorporation of chicken blood plasma on physico-chemical properties of cakes // J. Food Sci. Technol. 2010. Vol. 47, № 6. P. 693–696. 30. Kumar D., Tanwar V.K. Effects of incorporation of ground mustard on quality attributes of chicken nuggets // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 6. P. 759–762. 31. Nergiz C., Çelikkale D. The effect of consecutive steps of refining on squalene content of vegetable oils // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 3. P. 382–385. 32. Smith J., Charter E. Edited by Jim Smith and Edward Charter. 33. Rathina Raj K., Mahendrakar N.S. Effect of ensiling and organic solvents treatment on proteolytic enzymes of layer chicken intestine // J. Food Sci. Technol. 2010. Vol. 47, № 3. P. 320–324. 34. Pedrielli P., Skibsted L. Antioxidant synergy and regeneration effect of quercetin,(-)-epicatechin, and (+)-catechin on α-tocopherol in homogeneous solutions of peroxidating methyl linoleate // J. Agric. Food Chem. 2002.


141
35. Kosanić M., Ranković B., Vukojević J. Antioxidant properties of some lichen species // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 5. P. 584–590. 36. Bhattacharjee P. et al. A comparative qualitative study of the profile of volatile organic compounds associated with Salmonella contamination of packaged aged and fresh beef by HS-SPME/GC-MS // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 1. P. 1–13. 37. Sarangi B.K. et al. Purification of alkaline protease from chicken intestine by aqueous two phase system of polyethylene glycol and sodium citrate // J. Food Sci. Technol. 2011. Vol. 48, № 1. P. 36–44. 38. Cesa S. et al. Influence of fat extraction methods on the peroxide value in infant formulas // Food Res. Int. 2012. Vol. 48, № 2. P. 584–591. 39. Эмануэль Н., Лясковская Ю. Торможение процессов окисления жиров, 1961. 40. Эмануэль Н., Заиков Г. Цепные реакции: Исторический аспект, 1989. 41. Эмануэль Н., Гагарина А. Критические явления в цепных вырожденно-разветвленных реакциях // Успехи химии, 1966. 42. Эмануэль Н. Химическая и биологическая кинетика // Успехи химии, 1981. 43. Обухова Л., Эмануэль Н. Роль свободнорадикальных реакций окисления в молекулярных механизмах старения живых организмов // Успехи химии, 1983. 44. Эмануэль Н., Гáл Д. Окисление этилбензола: модельная реакция, 1984. 45. Эмануэль Н., Заиков Г., Майзус З. Роль среды в радикально-цепных реакциях окисления органических соединений, 1973.


142
46. Эмануэль Н., Бучаченко А. Химическая физика молекулярного разрушения и стабилизации полимеров, 1988. 47. Эмануэль Н., Бучаченко А. Химическая физика старения и стабилизации полимеров, 1982. 48. Эмануэль Н., Денисов Е., Майзус З. Цепные реакции окисления углеводородов в жидкой фазе, 1965. 49. ЭмануэльН., КнорреД. Курсхимическойкинетики, 1984. 50. Wasternack C., Hause B. Jasmonates: biosynthesis, perception, signal transduction and action in plant stress response, growth and development. An update to the 2007 review in Annals of Botany. // Ann. Bot. 2013. Vol. 111, № 6. P. 1021–1058. 51. Andreou A., Feussner I. Lipoxygenases-structure and reaction mechanism // Phytochemistry, 2009. 52. Andreou A., Brodhun F., Feussner I. Biosynthesis of oxylipins in non-mammals. // Prog. Lipid Res. 2009. Vol. 48, № 3–4. P. 148–170. 53. Kanehisa M., Goto S. KEGG: kyoto encyclopedia of genes and genomes. // Nucleic Acids Res. 2000. Vol. 28, № 1. P. 27–30. 54. Kanehisa M. et al. Data, information, knowledge and principle: back to metabolism in KEGG. // Nucleic Acids Res. 2014. Vol. 42, № Database issue. P. D199–205. 55. Billek G. Heated oils – chemistry and nutritional aspects. // Nutr. Metab. 1980. Vol. 24 Suppl 1. P. 200–210. 56. Billek G. Health aspects of thermoxidized oils and fats // Eur. J. Lipid Sci. Technol. 2000. Vol. 102. P. 587–593. 57. Esterbauer H. Cytotoxicity and genotoxicity of lipidoxidation // Am. J. Clin. Nurs. 1993. Vol. 57, № Suppl. P. 779S–786S. 58. Izaki Y., Yoshikawa S., Uchiyama M. Effect of ingestion of thermally oxidized frying oil on peroxidative criteria in rats // Lipids. 1984. Vol. 19, № 5. P. 324–331.


143
59. Kubow S. Routes of formation and toxic consequences of lipid oxidation products in foods // Free Radic. Biol. Med. 1992. Vol. 12, № 1. P. 63–81. 60. Eckl P.M., Ortner A., Esterbauer H. Genotoxic properties of 4hydroxyalkenals and analogous aldehydes // Mutat. Res. Mol. Mech. Mutagen. 1993. Vol. 290, № 2. P. 183–192. 61. Ishikawa T., Esterbauer H., Sies H. Role of cardiac glutathione transferase and of the glutathione S-conjugate export system in biotransformation of 4-hydroxynonenal in the heart. // J. Biol. Chem. 1986. Vol. 261, № 4. P. 1576–1581. 62. Esterbauer H., Schaur R.J., Zollner H. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes // Free Radic. Biol. Med. 1991. Vol. 11, № 1. P. 81–128. 63. Schaur, R. J.; Zollner, H.; Esterbauer H. Biological effects of aldehydes with particular attention to 4-hydroxynonenal and malonaldehyde // Membrane lipid oxidation / ed. Vigo-Pelfrey C. CRC Press, 1991. P. 141–163. 64. Vladimirov Y. Free Radicals in the Environment, Medicine and Toxicology / ed. Nohl H., Esterbauer H. Richelieu Press, 1994. 65. Gomes, R., Meek, M. E., Eggleton E. Concise International Chemical Assessment Document 42: Bromoethane // Concise International Chemical Assessment Document 43: Acrolein. Geneva, 2002. № 43. 66. Feussner I., Wasternack C. The lipoxygenase pathway. // Annu. Rev. Plant Biol. 2002. Vol. 53. P. 275–297. 67. Oarada M. et al. The effect of dietary lipid hydroperoxide on lymphoid tissues in mice. // Biochim. Biophys. Acta. 1988. Vol. 960, № 2. P. 229–235. 68. Indart A. et al. Teratogenic actions of thermally-stressed culinary oils in rats. // Free Radic. Res. 2002. Vol. 36, № 10. P. 1051–1058.


144
69. Nishikawa A., Sodum R., Chung F. trans.5.Hydroxy.2.nonenai. 1992. P. 54–58. 70. Draper H.H., Hadley M. A review of recent studies on the metabolism of exogenous and endogenous malondialdehyde. 1990. Vol. 20, № 9. P. 901–907. 71. Tabee E., Jägerstad M., Dutta P.C. Frying Quality Characteristics of French Fries Prepared in Refined Olive Oil and Palm Olein // J. Am. Oil Chem. Soc. 2009. Vol. 86, № 9. P. 885–893. 72. Stevenson S.G., Vaisey-Genser M., Eskin N.A.M. Quality control in the use of deep frying oils // J. Am. Oil Chem. Soc. 1984. Vol. 61, № 6. P. 1102–1108. 73. Schilmiller A.L., Koo A.J.K., Howe G.A. Functional diversification of acyl-coenzyme A oxidases in jasmonic acid biosynthesis and action. // Plant Physiol. 2007. Vol. 143, № 2. P. 812–824. 74. Bassan A. et al. Reports on toxicokinetics , toxicity and allergenicity data on substances to be evaluated as acceptable previous cargoes for edible fats and oils SCIENTIFIC REPORT submitted to EFSA Lot 1 – Vertebrate and Mammalian toxicology : Reports on toxicokinetics , 2012. P. 1–759. 75. Gutierrez R.G.-Q., Dobarganes M.C. Analytical Procedures for the Evaluation of Used Frying Fats. // Frying of Food. Principles.Changes. New Approoches. / ed. Varela G. Chichester, England., 1988. P. pp 141–154. 76. Eder E. et al. Mutagenicity of beta-alkyl substituted acrolein congeners in the Salmonella typhimurium strain TA100 and genotoxicity testing in the SOS chromotest. // Environ. Mol. Mutagen. 1992. Vol. 19, № 4. P. 338–345. 77. Eder E., Schuler D., Budiawan. Cancer risk assessment for crotonaldehyde and 2-hexenal: an approach. // IARC Sci. Publ. 1999. № 150. P. 219–232.


145
78. Eder E., Schuler D. An approach to cancer risk assessment for the food constituent 2-hexenal on the basis of 1,N2propanodeoxyguanosine adducts of 2-hexenal in vivo. // Arch. Toxicol. 2000. Vol. 74, № 10. P. 642–648. 79. Draminski W., Eder E., Henschler D. A new pathway of acrolein metabolism in rats. // Arch. Toxicol. 1983. Vol. 52, № 3. P. 243–247. 80. Nolen G. a, Alexander J.C., Artman N.R. Long-term rat feeding study with used frying fats. // J. Nutr. 1967. Vol. 93, № 3. P. 337–348. 81. Nolen G. A feeding study of a used, partially hydrogenated soybean oil, frying fat in dogs. // J. Nutr. 1973. Vol. 103, № 9. P. 1248–1255. 82. Меньщикова Е., Ланкин В., Зенков Н. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты // М. Фирма «Слово. 2006. 83. Schaich K. Lipid oxidation: theoretical aspects // Bailey’s Ind. oil fat Prod. 2005. 84. Bolland J.L., Koch H.P. The course of autoxidation reactions in polyisoprenes and allied compounds. Part IX. The primary thermal oxidation product of ethyl linoleate // J. Chem. Soc. The Royal Society of Chemistry, 1945. P. 445. 85. Farmer E.H., Koch H.P., Sutton D.A. The course of autoxidation reactions in polyisoprenes and allied compounds. Part VII. Rearrangement of double bonds during autoxidation // J. Chem. Soc. The Royal Society of Chemistry, 1943. P. 541. 86. Воробьева И., Байков В. Влияние различных соединений железа, введенных в состав обогащенной витаминами пшеничной муки, на ее липидный комплекс в процессе хранения // Вопросы питания. 2009. Vol. 78, № 6. P. 67–72. 87. Smith P., Waters W. Oxidations of organic compounds by cobaltic salts. Part XII. Oxidations of unsaturated acids // J. Chem. Soc. B Phys. …. 1969.


146
88. Lundberg W., Chipault J. The Oxidation of Methyl Linoleate at Various Temperatures1 // … Am. Chem. Soc. 1947. 89. Cruz Castillo M. et al. Gene-specific involvement of betaoxidation in wound-activated responses in Arabidopsis. // Plant Physiol. 2004. Vol. 135, № 1. P. 85–94. 90. Truman W. et al. Arabidopsis systemic immunity uses conserved defense signaling pathways and is mediated by jasmonates. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2007. Vol. 104, № 3. P. 1075–1080. 91. Hamberg M. Hidden stereospecificity in the biosynthesis of divinyl ether fatty acids. // FEBS J. 2005. Vol. 272, № 3. P. 736–743. 92. Hamberg M. et al. Activation of the fatty acid alphadioxygenase pathway during bacterial infection of tobacco leaves. Formation of oxylipins protecting against cell death. // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278, № 51. P. 51796–51805. 93. Creelman R.A., Mulpuri R. The oxylipin pathway in Arabidopsis. // Arabidopsis Book. 2002. Vol. 1. P. e0012. 94. Blée E. Impact of phyto-oxylipins in plant defense // Trends Plant Sci. 2002. Vol. 7, № 7. P. 315–321. 95. Savchenko T. V, Zastrijnaja O.M., Klimov V. V. Oxylipins and plant abiotic stress resistance. // Biochem. Biokhimii͡ a. 2014. Vol. 79, № 4. P. 362–375. 96. Koo A.J.K., Howe G.A. The wound hormone jasmonate. // Phytochemistry. 2009. Vol. 70, № 13–14. P. 1571–1580. 97. Rosahl S., Feussner I. Oxylipins // Plant Lipids: Biology, Utilisation and Manipulation / ed. Murphy D.J. Oxford: Blackwell Publishing, 2005. P. 328–354. 98. Wasternack C. Jasmonates: an update on biosynthesis, signal transduction and action in plant stress response, growth and development. // Ann. Bot. 2007. Vol. 100, № 4. P. 681–697.


147
99. Jahn U., Galano J.-M., Durand T. Beyond prostaglandins-chemistry and biology of cyclic oxygenated metabolites formed by freeradical pathways from polyunsaturated fatty acids. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2008. Vol. 47, № 32. P. 5894–5955. 100. Tsitsigiannis D.I., Keller N.P. Oxylipins as developmental and host-fungal communication signals. // Trends Microbiol. Elsevier, 2007. Vol. 15, № 3. P. 109–118. 101. Browse J. Jasmonate passes muster: a receptor and targets for the defense hormone. // Annu. Rev. Plant Biol. Annual Reviews, 2009. Vol. 60. P. 183–205. 102. Kahn R.A., Durst F. Function and evolution of plant cytochrome P450 // Evolution of Metabolic Pathways / ed. Romeo J. Pergamon Press, 2000. P. 151–189. 103. Saffert A. et al. A dual function alpha-dioxygenase-peroxidase and NAD(+) oxidoreductase active enzyme from germinating pea rationalizing alpha-oxidation of fatty acids in plants. // Plant Physiol. 2000. Vol. 123, № 4. P. 1545–1552. 104. Kato T. et al. Abnormal Catabolites of Unsaturated Fatty Acids by In Vitro Reaction of Crude Enzyme from Infected Higher Plants. // Chem. Lett. The Chemical Society of Japan, 1994. № 4. P. 761–762. 105. Kühn H. et al. Formation of ketodienoic fatty acids by the pure pea lipoxygenase-1. // Eicosanoids. 1991. Vol. 4, № 1. P. 9–14. 106. Noordermeer M.A., Veldink G.A., Vliegenthart J.F. Spectroscopic studies on the active site of hydroperoxide lyase; the influence of detergents on its conformation. // FEBS Lett. 2001. Vol. 489, № 2–3. P. 229–232. 107. Grechkin A. Recent developments in biochemistry of the plant lipoxygenase pathway. // Prog. Lipid Res. 1998. Vol. 37, № 5. P. 317–352.


148
108. Ziegler J. et al. Molecular cloning of allene oxide cyclase. The enzyme establishing the stereochemistry of octadecanoids and jasmonates. // J. Biol. Chem. 2000. Vol. 275, № 25. P. 19132–19138. 109. Smith W.L., Murphy R.C. Biochemistry of Lipids, Lipoproteins and Membranes // Biochemistry of Lipids, Lipoproteins and Membranes. Elsevier, 2016. 259–296 p. 110. Gardner H. Sequential enzymes of linoleic acid oxidation in corn germ: lipoxygenase and linoleate hydroperoxide isomerase // J. Lipid Res. 1970. 111. Guss P., Richardson T., Stahmann M. Oxidation of various lipid substrates with unfractionated soybean and wheat lipoxidase // J. Am. Oil …. 1968. 112. Shen N. et al. Oxidative stabilities of soybean oils that lack lipoxygenases // J. Am. Oil …. 1996. 113. Лисицын А. Развитие теоретических основ процесса окисления растительных масел и разработка рекомендаций по повышению их стабильности к окислению // дис.… д-ратехн. наук. 2006. 114. Frankel E.N. Lipid Oxidation // Lipid Oxidation. Elsevier, 2012. 299–354 p. 115. Kalua C.M. et al. Olive oil volatile compounds, flavour development and quality: A critical review // Food Chem. 2007. Vol. 100, № 1. P. 273–286. 116. White P.J. Methods for measuring changes in deep-fat frying oils // Food Technol. 1991. 117. Lumley L. Polar Cornpounds in Heated Oils // Frying of Food. Principles. Changes, New Approoches. / ed. Varela G. 1988. P. 166 – 173. 118. Методические рекомендации по организации контроля качества фритюрных жиров на предприятиях питания. 2006.


149
119. Wanten G.J. a, Janssen F.P., Naber a. H.J. Saturated triglycerides and fatty acids activate neutrophils depending on carbon chain-length // Eur. J. Clin. Invest. 2002. Vol. 32, № 4. P. 285–289. 120. Johansson A.-S. et al. Docosahexaenoic acid stabilizes soluble amyloid-beta protofibrils and sustains amyloid-beta-induced neurotoxicity in vitro. // FEBS J. 2007. Vol. 274, № 4. P. 990–1000. 121. Roseth S., Fykse E.M., Fonnum F. The effect of arachidonic acid and free fatty acids on vesicular uptake of glutamate and γ-aminobutyric acid // Eur. J. Pharmacol. 1998. Vol. 341, № 2–3. P. 281–288. 122. RTECS. RTECS file. RTECS number: RF9990000. 123. Appel M.J., van Garderen-Hoetmer A., Woutersen R.A. Effects of dietary linoleic acid on pancreatic carcinogenesis in rats and hamsters. // Cancer Res. 1994. Vol. 54, № 8. P. 2113–2120. 124. Black P.N. The prevalence of allergic disease and linoleic acid in the diet. // J. Allergy Clin. Immunol. 1999. Vol. 103, № 2 Pt 1. P. 351–352. 125. CCRIS (Chemical Carcinogenesis Research Information System), online. [Electronic resource]. URL: http://toxnet.nlm.nih.gov/cgibin/sis/htmLgen?CCRIS. (accessed: 11.05.2011). 126. Coyral-Castel S. et al. Effects of unsaturated fatty acids on progesterone secretion and selected protein kinases in goat granulosa cells. // Domest. Anim. Endocrinol. 2010. Vol. 38, № 4. P. 272–283. 127. Cury-Boaventura M.F., Pompéia C., Curi R. Comparative toxicity of oleic acid and linoleic acid on Jurkat cells. // Clin. Nutr. 2004. Vol. 23, № 4. P. 721–732. 128. Cury-Boaventura M.F., Pompéia C., Curi R. Comparative toxicity of oleic acid and linoleic acid on Raji cells. // Nutrition. 2005. Vol. 21, № 3. P. 395–405. 129. Kankaanpää P. et al. Dietary fatty acids and allergy. // Ann. Med. 1999. Vol. 31, № 4. P. 282–287.


150
130. Mamalakis G., Kafatos A., Board S. Type A behavior and adipose tissue linoleic acid: implications for stress management. // J. Am. Coll. Nutr. 1994. Vol. 13, № 3. P. 292–297. 131. Matsuoka T. et al. Elevated dietary linoleic acid increases gastric carcinoma cell invasion and metastasis in mice. // Br. J. Cancer. 2010. Vol. 103, № 8. P. 1182–1191. 132. Parnas M., Peters M., Minke B. Linoleic acid inhibits TRP channels with intrinsic voltage sensitivity: Implications on the mechanism of linoleic acid action. // Channels (Austin). Vol. 3, № 3. P. 164–166. 133. Sammon A.M. Dietary linoleic acid, immune inhibition and disease. // Postgrad. Med. J. 1999. Vol. 75, № 881. P. 129–132. 134. Teshima R. et al. Effects of polyunsaturated fatty acids on calcium response and degranulation from RBL-2H3 cells. // Int. Immunopharmacol. 2007. Vol. 7, № 2. P. 205–210. 135. Tezabwala B.U., Bennett M., Grundy S.M. Immunotoxicity of polyunsaturated fatty acids in serum-free medium. // Immunopharmacol. Immunotoxicol. 1995. Vol. 17, № 2. P. 365–383. 136. Final Report on the Safety Assessment of Oleic Acid, Laurie Acid, Palmitic Acid, Myristic Acid, and Stearic Acid // Int. J. Toxicol. 1987. Vol. 6, № 3. P. 321–401. 137. RTECS. file. RTECS number: OE9800000. 138. DHI M.L. and P.T.K. (PKT) L. Appendix 2 – Review of Annex IV of the Regulation No. 1907/2006 (REACH) – Evaluation of existing entries. Final [Electronic resource]. 2008. URL: http://ec. europa.eu/environment/chemicals/reach/pdf/6_report_an_4.pdf (accessed: 04.08.2015). 139. Weatherill A.R. et al. Saturated and polyunsaturated fatty acids reciprocally modulate dendritic cell functions mediated through TLR4. // J. Immunol. 2005. Vol. 174, № 9. P. 5390–5397.


151
140. Lee J.Y. et al. Saturated Fatty Acid Activates but Polyunsaturated Fatty Acid Inhibits Toll-like Receptor 2 Dimerized with Toll-like Receptor 6 or 1 // J. Biol. Chem. 2004. Vol. 279, № 17. P. 16971–16979. 141. Demarne Y. et al. Effects of prolonged ingestion of dodecanoic or lauric acid on the secretion of fatty acids in the rat mammary gland. // C. R. Acad. Sci. Hebd. Seances Acad. Sci. D. 1977. Vol. 285, № 1. P. 69–71. 142. Clark W.L., Serbia G.W. Safety aspects of frying fats and oils // Food Technol. 1991. 143. Bull A.W., Nigro N.D., Marnett L.J. Structural requirements for stimulation of colonic cell proliferation by oxidized fatty acids. // Cancer Res. 1988. Vol. 48, № 7. P. 1771–1776. 144. Abraham K. et al. Toxicology and risk assessment of acrolein in food. // Mol. Nutr. Food Res. 2011. Vol. 55, № 9. P. 1277–1290. 145. Liu X., Zhu M., Xie J. Mutagenicity of acrolein and acroleininduced DNA adducts. // Toxicol. Mech. Methods. 2010. Vol. 20, № 1. P. 36–44. 146. Parent R.A., Caravello H.E., Hoberman A.M. Reproductive study of acrolein on two generations of rats. // Fundam. Appl. Toxicol. 1992. Vol. 19, № 2. P. 228–237. 147. Parent R.A. et al. Developmental toxicity of acrolein in New Zealand white rabbits. // Fundam. Appl. Toxicol. 1993. Vol. 20, № 2. P. 248–256. 148. Parent R.A., Caravello H.E., Long J.E. Two-year toxicity and carcinogenicity study of acrolein in rats. // J. Appl. Toxicol. 1992. Vol. 12, № 2. P. 131–139. 149. Auerbach S.S. et al. A comparative 90-day toxicity study of allyl acetate, allyl alcohol and acrolein. // Toxicology. 2008. Vol. 253, № 1–3. P. 79–88.


152
150. Faroon O. et al. Acrolein health effects. // Toxicol. Ind. Health. 2008. Vol. 24, № 7. P. 447–490. 151. Parent R.A. et al. Metabolism and distribution of [2, 3– 14C]acrolein in Sprague-Dawley rats. II. Identification of urinary and fecal metabolites. // Toxicol. Sci. 1998. Vol. 43, № 2. P. 110–120. 152. Akubue P.I. et al. Excretion of malondialdehyde, formaldehyde, acetaldehyde, acetone and methyl ethyl ketone in the urine of rats given an acute dose of malondialdehyde // Arch. Toxicol. 1994. Vol. 68, № 5. P. 338–341. 153. Bird R.P., Draper H.H., Valli V.E. Toxicological evaluation of malonaldehyde: a 12-month study of mice. // J. Toxicol. Environ. Health. 1982. Vol. 10, № 6. P. 897–905. 154. Crawford D.L. et al. Acute toxicity of malonaldehyde. // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1965. Vol. 7, № 6. P. 826–832. 155. Piche L.A. et al. Identification of N-epsilon-(2-propenal)lysine as the main form of malondialdehyde in food digesta. // Carcinogenesis. 1988. Vol. 9, № 3. P. 473–477. 156. Piché L.A., Draper H.H., Cole P.D. Malondialdehyde excretion by subjects consuming cod liver oil vs a concentrate of n-3 fatty acids. // Lipids. 1988. Vol. 23, № 4. P. 370–371. 157. Apaja M. Evaluation of toxicity and carcinogenicity of malonaldehyde. // No. 55 Anatomica, Pathologica, Microbiologica № 8 (Oulu University of Oulu). 1980. P. 1–61. 158. Shamberger R.J., Andreone T.L., Willis C.E. Antioxidants and cancer. IV. Initiating activity of malonaldehyde as a carcinogen. // J. Natl. Cancer Inst. 1974. Vol. 53, № 6. P. 1771–1773. 159. Siu G.M., Draper H.H., Valli V.E. Oral toxicity of malonaldehyde: a 90-day study on mice. // J. Toxicol. Environ. Health. 1983. Vol. 11, № 1. P. 105–119.


153
160. NTP Toxicology and Carcinogenesis Studies of Malonaldehyde, Sodium Salt (3-Hydroxy-2-propenal, Sodium Salt) (CAS № 24382-04-5) in F344/N Rats and B6C3F1 Mice (Gavage Studies). // Natl. Toxicol. Program Tech. Rep. Ser. 1988. Vol. 331. P. 1–182. 161. Chan P.C. NTP toxicity studies of toxicity studies of 2,4decadienal (CAS No. 25152-84-5) administered by gavage to F344/N Rats and B6C3F1 mice. // Toxic. Rep. Ser. 2011. № 76. P. 1–94. 162. Chang Y.-C., Lin P. Trans, trans-2,4-decadienal induced cell proliferation via p27 pathway in human bronchial epithelial cells. // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2008. Vol. 228, № 1. P. 76–83. 163. Chang L.W., Lo W.-S., Lin P. Trans, trans-2,4-decadienal, a product found in cooking oil fumes, induces cell proliferation and cytokine production due to reactive oxygen species in human bronchial epithelial cells. // Toxicol. Sci. 2005. Vol. 87, № 2. P. 337–343. 164. Cabré A. et al. Cytotoxic effects of the lipid peroxidation product 2,4-decadienal in vascular smooth muscle cells. // Atherosclerosis. 2003. Vol. 169, № 2. P. 245–250. 165. Girona J. et al. 2,4-Decadienal downregulates TNF-alpha gene expression in THP-1 human macrophages. // Atherosclerosis. 2001. Vol. 158, № 1. P. 95–101. 166. Young S.-C. et al. DNA damages induced by trans, trans-2,4decadienal (tt-DDE), a component of cooking oil fume, in human bronchial epithelial cells. // Environ. Mol. Mutagen. 2010. Vol. 51, № 4. P. 315–321. 167. Hung H.-S. et al. Association of cooking oil fumes exposure with lung cancer: involvement of inhibitor of apoptosis proteins in cell survival and proliferation in vitro. // Mutat. Res. 2007. Vol. 628, № 2. P. 107–116.


154
168. Romano G., Miralto A., Ianora A. Teratogenic effects of diatom metabolites on sea urchin Paracentrotus lividus embryos. // Mar. Drugs. 2010. Vol. 8, № 4. P. 950–967. 169. Dittberner U. et al. Genotoxic effects of 2-trans-hexenal in human buccal mucosa cells in vivo. // Mutat. Res. 1997. Vol. 390, № 1–2. P. 161–165. 170. Gölzer P. et al. (E)-2-hexenal-induced DNA damage and formation of cyclic 1,N2-(1,3-propano)-2’-deoxyguanosine adducts in mammalian cells. // Chem. Res. Toxicol. Vol. 9, № 7. P. 1207–1213. 171. Gaunt I.F. et al. Acute and short-term toxicity studies on trans2-hexenal. // Food Cosmet. Toxicol. 1971. Vol. 9, № 6. P. 775–786. 172. Kiwamoto R., Rietjens I.M.C.M., Punt A. A physiologically based in silico model for trans-2-hexenal detoxification and DNA adduct formation in rat. // Chem. Res. Toxicol. 2012. Vol. 25, № 12. P. 2630–2641. 173. Stout M.D. et al. Toxicity, DNA binding, and cell proliferation in male F344 rats following short-term gavage exposures to trans-2hexenal. // Toxicol. Pathol. 2008. Vol. 36, № 2. P. 232–246. 174. Ping P. et al. Cardiac toxic effects of trans-2-hexenal are mediated by induction of cardiomyocyte apoptotic pathways. // Cardiovasc. Toxicol. 2003. Vol. 3, № 4. P. 341–351. 175. Nádasi E. et al. Carcinogenic potential of trans-2-hexenal is based on epigenetic effect. // In Vivo. Vol. 19, № 3. P. 559–562. 176. Wu S.C., Yen G.C., Sheu F. Mutagenicity and identification of mutagenic compounds of fumes obtained from heating peanut oil. // J. Food Prot. 2001. Vol. 64, № 2. P. 240–245. 177. Viola P., Bianchi A. Clinical aspects of the frying of foods // Frying of Food, Principles. 1988.


155
178. Lamboni C., Sébédio J.-L., Perkins E.G. Cyclic fatty acid monomers from dietary heated fats affect rat liver enzyme activity // Lipids. 1998. Vol. 33, № 7. P. 675–681. 179. Martin J.-C. et al. Cyclic Fatty Acid Monomers from Heated Oil Modify the Activities of Lipid Synthesizing and Oxidizing Enzymes in Rat Liver // J. Nutr. 2000. Vol. 130, № 6. P. 1524–1530. 180. Iwaoka W.T., Perkins E.G. Nutritional effects of the cyclic monomers of methyl linolenate in the rat. // Lipids. 1976. Vol. 11, № 4. P. 349–353. 181. Gabriel H.G., Alexander J.C., Valli V.E. Nutritional and metabolic studies of distillable fractions from fresh and thermally oxidized corn oil and olive oil. // Lipids. 1978. Vol. 13, № 1. P. 49–55. 182. Lang K. et al. Ernährungsphysiologische eigenschaften von fritierfetten // Steinkopff. 1978. Vol. 21. P. 1–61. 183. Lamboni C., Perkins E.G. Effects of dietary heated fats on rat liver enzyme activity. // Lipids. 1996. Vol. 31, № 9. P. 955–962. 184. Narasimhamurthy K., Raina P.L. Long term feeding effects of heated and fried oils on lipids and lipoproteins in rats. // Mol. Cell. Biochem. 1999. Vol. 195, № 1–2. P. 143–153. 185. Chao P.-M. et al. A high oxidised frying oil content diet is less adipogenic, but induces glucose intolerance in rodents. // Br. J. Nutr. 2007. Vol. 98, № 1. P. 63–71. 186. Ringseis R. et al. Feeding oxidized fat during pregnancy upregulates expression of PPARalpha-responsive genes in the liver of rat fetuses. // Lipids Health Dis. 2007. Vol. 6. P. 6. 187. Totani N. et al. Chemical properties and cytotoxicity of thermally oxidized oil. // J. Oleo Sci. 2008. Vol. 57, № 3. P. 153–160. 188. Chiang Y.-F. et al. Dietary oxidised frying oil causes oxidative damage of pancreatic islets and impairment of insulin secretion, effects


156
associated with vitamin E deficiency. // Br. J. Nutr. 2011. Vol. 105, № 9. P. 1311–1319. 189. Huang C.-F. et al. Oxidized frying oil and its polar fraction fed to pregnant mice are teratogenic and alter mRNA expressions of vitamin A metabolism genes in the liver of dams and their fetuses. // J. Nutr. Biochem. 2014. Vol. 25, № 5. P. 549–556. 190. Lushchak V., Semchuk N. Tocopherol biosynthesis: chemistry, regulation and effects of environmental factors // Acta Physiol. Plant. 2012. 191. Ramamurthi S., McCurdy A., Tyler R. Deodorizer distillate: A valuable byproduct // Proc. World Conf. Oilseed Edible Oils Process. 1998. 192. Naumov V., Vasil’ev R. Antioxidant and prooxidant effects of tocopherol // Kinet. Catal. 2003. 193. Frankel E., Meyer A. The problems of using one‐dimensional methods to evaluate multifunctional food and biological antioxidants // J. Sci. Food …. 2000. 194. Hamilton R., Kalu C., McNeill G. Effects of tocopherols, ascorbyl palmitate, and lecithin on autoxidation of fish oil // … Am. Oil …. 1998. 195. Marinova E., Toneva A., Yanishlieva N. Synergistic antioxidant effect of α-tocopherol and myricetin on the autoxidation of triacylglycerols of sunflower oil // Food Chem. 2008. 196. Azizkhani M., Zandi P. Effects of some natural antioxidant mixtures on margarine stability // World Acad. Sci. Eng. Technol. 2010. Vol. 69115, № 1. P. 93–96. 197. Saucier C.T., Waterhouse A.L. Synergetic activity of catechin and other antioxidants // J. Agric. Food Chem. 1999. Vol. 47, № 11. P. 4491–4494.


157
198. Liu D. et al. The scavenging capacity and synergistic effects of lycopene, vitamin E, vitamin C, and β-carotene mixtures on the DPPH free radical // LWT – Food Sci. Technol. 2008. Vol. 41, № 7. P. 1344–1349. 199. Guzman R. de et al. Synergistic effects of antioxidants on the oxidative stability of soybean oil-and poultry fat-based biodiesel // JAOCS, J. Am. Oil Chem. Soc. 2009. 200. Gray J.I. Measurement of lipid oxidation: A review // J. Am. Oil Chem. Soc. 1978. Vol. 55, № 6. P. 539–546. 201. Velasco J. et al. Influence of two lipid extraction procedures on the peroxide value in powdered infant formulas // Eur. Food Res. Technol. 2008. Vol. 226, № 5. P. 1159–1166.
1. Chandrasekaran S., Ramanathan S., Basa T. Microwave food processing – A review // Food Research International. – 2013. – Vol. 52, № 1. – P. 243–326. 2. Microwave cooking and food safety. Risk Assessment Studies Report No. 19. Food and Environmental Hygiene Department. The Government of the Hong Kong Special Administrative Region. – 2005. – 28 p. (http: // www.cfs.gov.hk/english/programme/programme_rafs/files/ microwave_ra_e.pdf). 3. Center for devices and radiological Health. Microwave oven radiation. U.S. Food and Drug Administration; 2000. [cited 04 Aug 17] Available from: URL: http: // www.fda.gov/cdrh/consumer/microwave.html. 4. Center for devices and radiological Health. Microwave oven radiation. U.S. Food and Drug Administration; 2000. [cited 04 Aug 17] Available from: URL: http: // www.fda.gov/cdrh/consumer/microwave.html. 5. Mullin J. Microwave processing // In: Gould, GW, ed. New methods of food preservation. London: Chapman& Hill. – 1995. – P. 112–134. 6. Ohlsson T. Domestic use of microwave ovens. In: Encyclopaedia of food science food technology and nutrition/ Robinson M. R, Sadler R.K, ed. London: Academic Press. – 1993. – Vol. 2. – Р. 1232–1237.


171
7. Das A.K., Rajkumar V. Effect of different fat level on microwave cooking properties of goat meat patties // J Food Sci Technol. – 2013. – Vol. 50. – № 6. – Р. 1206–1211. 8. Коденцова В.М., Кочеткова А.А., Рисник Д.В., Саркисян В.А., Бессонов В.В. Влияние нагрева в микроволновой печи на жировой компонент и сохранность витаминов в пищевых продуктах // Вопр. питания. – 2015. – Т.84., № 5. – С. 16–30. 9. Коденцова В.М., Кочеткова А.А., Смирнова Е.А., Саркисян В.А., Бессонов В.В. Состав жирового компонента рациона и обеспеченность организма жирорастворимыми витаминами // Вопр. питания. – 2014. – Т. 83, № 6. – С. 4–17. 10. Malheiro R., Oliveira I., Vilas-Boas M., Falcão S., Bento A., Pereira J.A. Effect of microwave heating with different exposure times on physical and chemical parameters of olive oil // Food and Chemical Toxicology. – 2009. – Vol.47. – Р. 92–97. 11. Tan C.P, Che Man Y.B., Jinap S., Yusoff M.S.A. Effects of microwave heating on the quality characteristics and thermal properties of RBD palm olein // Innovative Food Science & Emerging Technologies. – 2002. – Vol. 3. – Р. 157–163. 12. Vieira T.M.F.S, Regitano-D’Arce M.A.B. Stability of oils heated by microwave: UV– spectrophotometric evaluation Food Science and Technology (Campinas) // Ciênc. Tecnol. Aliment. – 1998. – Vol. 18, № 4. – P. 433–437. 13. Chiavaro E., Rodriquez-Estrada M.T., Vittadini E., Pellegrini N. Microwave heating of different vegetable oils: Relation between chemical and thermal parameters. LWT- Food Sci. Technol. – 2010. – Vol. 43. – Р. 1104–1112. 14. Olabemiwo O.M., Esan A.O., Adepoju A.J., Omodara N.B. Effect of Microwave Heating On Fatty Acid Profiles of Three Nigerian


172
Vegetable Oils // IOSR Journal of Applied Chemistry (IOSR-JAC). – 2014. – Vol. 7, № 4. – P. 51–54. 15. Albi T., Lanzon A., Guinda A., Leon M., Perez-Camino M.C. Microwave and conventional heating effects on thermoxidative degradation of edible fats // J. Agric. Food Chem. – 1997. – Vol. 45. – Р. 3795–3798. 16. Albi T., Lanzon A., Guinda A., Perez-Camino M. C., Leon M. Microwave and conventional heating effects on some physical and chemical parameters of edible fats // J. Agric. Food Chem. – 1997. – Vol.45. – Р. 3000–3003. 17. Borges T.H., Malheiro R., de Souza A. M., Casal S., Pereira J.A. Microwave heating induces changes in the physicochemical properties of baru (Dipteryx alataVog.) and soybean crude oils // Eur. J. Lipid Sci. Technol. – 2014. – Vol. 116. – Р. 1–11. 18. Ali M.A., Nouruddeen Z.B., Muhamad I.I. Latip R.AA. Othman N.H. Effect of Microwave Heating on the Quality Characteristics of Canola Oil in the Presence of Palm Olein // Acta Sci. Pol., Technol. Aliment. – 2013. – Т. 12, № 3. – Р. 241–251. 19. El‐Abassy, R.M., Donfack, P., Materny A., Assessment of conventional and microwave heating induced degradation of carotenoids in olive oil by VIS Raman spectroscopy and classical methods // Food Res. Int. – 2010. – Vol. 43. – Р. 694–700. 20. Farag R.S., El-Baroty G.S., Basuny A.M. The influence of phenolic extracts obtained from the olive plant (cvs. Picual and Kronakii), on the stability of sunflower oil. Int // J. Food Sci. Technol. – 2003. – Vol.38. – Р. 81–87. 21. Shaker E.S. Antioxidative effect of extracts from red grape seed and peel on lipid oxidation in oils of sunflower // LWT-Food Sci. Technol. – 2006. – Vol. 39. – Р. 883–892.


173
22. Lolos M., Oreopoulou V., Tzia C. Oxidative stability of potato chips: effect of frying oil type, temperature and antioxidants // Journal of the Science of Food and Agriculture. – 1999. – Vol. 79. – P. 1524–1528. 23. Houhoula D.P., Oreopoulou V., Tzia C. Antioxidant efficiency of oregano during frying and storage of potato chips // Journal of the Science of Food and Agriculture. – 2003. – Vol. 83. – P. 1499–1503. 24. Che Man Y.B. Jaswir I. Effects of natural and synthetic antioxidants on changes in refined bleached and deodorized palm olein during deep – fat frying of potato chips // Journal American Oil Chemistry Society. – 1999. – Vol. 76. – P. 331–339. 25. Gordon M.H. and Kourimska L. The effect of antioxidants on changes in oils during heating and deep frying // Journal of the Science of Food and Agriculture. – 1995. – Vol. 68. – P. 347–353. 26. Yanislieva V.N., Marinova E.M., Marekov I.N. and Gordon M.H. Effect of ethanol extract from summer savory (Saturejae hortensis L) on the stability of sunflower oil at frying temperature // Journal of the Science of Food and Agriculture. – 1997. – Vol. 74. – P. 524–530. 27. Zandi P., Gordon M.H. Antioxidant activity of extracts from old tea leaves // Food Chemistry. – 1999. – Vol. 64. – P. 285–288. 28. Tian L.L., White P.J. Antipolymerization activity of oat extract in soy bean and cottonseed oils under frying conditions // Journal of the American Oil Chemists’ Society. – 1994. – Vol. 71. – P. 1087–1094. 29. Lee J., Lee S., Lee H., Park K. and Choe E. Spinach (Spinacia oleracea) Powder as a Natural Food-Grade Antioxidant in DeepFat-Fried Products // Journal of Agricultural and Food Chemistry. – 2002. – Vol. 50. – P. 5664–5669. 30. Abdalla E.A., Roozen, J.P. Effect of plant extracts on the oxidative stability of sunflower oil and emulsion // Food Chemistry. – 1999. – Vol. 64. – P. 323–329.


174
31. Shyamala B.N., Gupta S., Jyothi Lakshmi A., Prakash J. Leafy vegetable extracts – antioxidant activity and effect on storage stability of heated oil // Innovative Food Science and Emerging Technologies. – 2005. – Vol. 6, № (2). – P. 239–245. 32. Beddows C.G., Jagait C. and Kelly M.J. Preservation of atocopherol in sunflower oil by herbs and spices // International Journal of Food Science and Nutrition. – 2000. – Vol. 51. – P. 327–339. 33. Salta F.N., Mylona A., Chiou A., Boskou G., Andrikopoulos N.K. Oxidative stability of edible vegetable oils enriched in polyphenols with olive leaf extract // Food Science and Technology International. – 2007. – Vol. 13. – Р. 413–421. 34. Malheiro R., Rodrigues N., Manzke G., Bento, A. et al. The use of olive leaves and tea extracts as effective antioxidants against the oxidation of soybean oil under microwave heating // Ind. Crops Prod. – 2013. – Vol. 44. – Р. 37–43. 35. Malheiro R., Casal S., Lamas H., Bento A., Pereira J. A., Can tea extracts protect extra virgin olive oil from oxidation during microwave heating? // Food Res. Int. – 2012. – 48. – Р. 148–154. 36. Rodrigues N., Malheiro R., Casal S., Manzanera M. C. A. et al. Influence of spike lavender (Lavandula latifolia Med.) essential oil in the quality, stability and composition of soybean oil during microwave heating // Food Chem. Toxicol. – 2012. – Vol. 50. – Р. 2894–2901. 37. List G.R. Trans fat replacements: A global overview // Lipid Technology. – 2014. – Vol. 26, № 6. – Р. 131–133. 38. Herzallah S.M., Humeid M.A., Al-Ismail K.M. Effect of Heating and Processing Methods of Milk and Dairy Products on Conjugated Linoleic Acid and Trans Fatty Acid Isomer Content // J. Dairy Sci. – 2005. – Vol.88. – Р.1301–13102.
1. Самсонов М.А. Концепция сбалансированного питания и её значение в изучении механизмов лечебного действия пищи. // Вопр. питания. – 2002. – № 5. – С. 3–9. 2. В.А. Тутельян и соавт. Научные основы здорового питания. – М.: Издательский дом «Панорама», 2010. – 816 с. 3. ТР ТС 027/2012 «О безопасности отдельных видов специализированной пищевой продукции, в том числе диетического лечебного и диетического профилактического питания» http://www.eurasiancommission.org/ru/act/texnreg/deptexreg/tr/Documents/P_34.pdf. 4. Eating & Health Module User’s Guide (2010 Edition) March 2010/ – USDA; http://www.ers.usda.gov/media/138567/ap047_1_.pdf. 5. Добровольский В.Ф. Отечественный и зарубежный опыт по созданию продуктов профилактического действия. / Пищевая промышленность. – 1998. – № 10. – С. 54–55. 6. Фадеева И.Д. Пищевая биологически активная добавка. – Патент РФ 2113806. 7. Макаров Н.В. Минералоорганический субстрат, обладающий свойством биологического стимулятора. – Патент РФ 2016510. 8. Антипова Л.В., Рожков С.В. Способ получения пищевого полуфабриката из крови убойных животных. – Патент РФ 2126215. 9. Антипова Л.В.; Рожков С.В. Способ получения пищевого полуфабриката из крови убойных животных. – Патент РФ 2277815. 10. Высоцкий В.Г., Круглик В.И., Сажинов Г.Ю. и др. Белково-минеральные модули и способы их получения – Патент РФ № 92001191. 11. Титов Е.И., Алексахина В.А., Нефедова Н.В. и др. Диетическая биодобавка для молочных и мясных продуктов целевого назначения Текст.: Патент РФ № 2097990.


187
12. Неклюдов А.Д. и др. Получение гидролизатов из мясокостного сырья. Мясная индустрия, 1998. – № 6. – С. 42–43. 13. ТР ТС 022/211 «Пищевая продукция в части ее маркировки» http://www.eurasiancommission.org/ru/act/texnreg/deptexreg/tr/ Documents/TrTsPishevkaMarkirovka.pdf 14. Бреннер В.В., Волик Л.В. и др. Белково-пептидный модуль для производства продуктов функционального и специализированного питания для лиц, подверженных интенсивным физическим нагрузкам. – Патент РФ 2388350. 15. Жировые продукты для здорового питания. Современный взгляд / Кочеткова А.А., Тутельян В.А., Нечаев А.П., Ипатова Л.Г. – М.: ДеЛи принт, 2009. – 396 C. 16. Транс-изомеры жирных кислот: история вопроса, актуальность проблемы, пути решения/ Зайцева Л.В., Нечаев А.П., Бессонов В.В. – М.: ДеЛи принт, 2012. – 56с. 17. Коденцова В.М., Кочеткова А.А., Смирнова Е.А, Саркисян В.А., БессоновВ.В. Состав жирового компонента рациона и обеспеченность организма жирорастворимыми витаминами // Вопросы питания.- – 2015 – Т.83, № 6. – С. 4–17. 18. Sarkisyan V.A.,Smirnova E.A., Kochetkova A.A., Bessonov V.V. Synergistic Interactions of Antioxidants in Fatty Products // Food Processing Industry, 2013. – № 1. – Р.18–21. 19. Коденцова В.М, Гмошинская М.В., Вржесинская О.А. Витаминно-минеральные комплексы для беременных и кормящих женщин: обоснование состава и доз // Репродуктивное здоровье детей и подростков. – 2015, № 3. – С. 73–96. 20. Саркисян В.А., Смирнова Е.А., Кочеткова А.А., Бессонов В.В. Синергические взаимодействия антиоксидантов в жировых продуктах // Пищевая промышленность, 2013. – № 3. – С. 14–17.


188
21. Гаппаров М.М., Соколов А.И., Мартынова Е.А., Куликова О.С., Бессонов В.В., Беркетова Л.В. Физико-химические и биологические свойства пищевых модифицированных крахмалов. // Вопросы питания. – 2007. – Т. 76. – № 4. – С. 15–20. 22. Печерская Н.В., Байков В.Г., Кочеткова А.А., Бессонов В.В. Сравнительная характеристика антиоксидантов растительного происхождения в составе жировых эмульсионных продуктов. // Вопросы питания. – 2006. – Т. 75. – № 4. – С. 20–22. 23. Bosscher D. Availabilities of calcium, iron, and zinc from dairy infant formulas is affected by soluble dietary fibers and modified starch fractions / Bosscher D, Van Caillie-Bertrand M, Van Cauwenbergh R etc. // Nutrition. – 2003. Vol. 19(7–8). – P.641–645.
1. МР 2.3.1.2432–08. Нормы физиологических потребностей в энергии и пищевых веществах для различных групп населения Российской Федерации. Методическиерекомендации, 2008. 2. Expert Consultation on Fats and Fatty Acids in Human N. Fats and fatty acids in human nutrition: report of an Expert Consultation; 10-14 November 2008, Geneva: book. Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2010. 3. Саркисян В.А. et al. База данных химического состава растительных масел и животных жиров. RU, 2015. 4. Bott R. Counting: The Art of Enumerative Combinatorics // Igarss 2014, 2014. –Vol. 64, № 1. – Р. 1–5 . 5. Rudich S., Wigderson A. Computational complexity theory. 2004. 6. Borgwardt K.H. The simplex method: A probabilistic analysis, 1987. 7. Abraham M.J. et al. Gromacs: High performance molecular simulations through multi-level parallelism from laptops to supercomputers // SoftwareX, 2015. –Vol. 1–2. –P. 19–25.


204
8. Páll S. et al. Tackling exascale software challenges in molecular dynamics simulations with GROMACS // Lecture Notes in Computer Science (including subseries Lecture Notes in Artificial Intelligence and Lecture Notes in Bioinformatics). Springer International Publishing, 2015. – Vol. 8759. – P. 3–27. 9. Pronk S. et al. GROMACS 4.5: A high-throughput and highly parallel open source molecular simulation toolkit // Bioinformatics. Oxford University Press, 2013. – Vol. 29, № 7. – P. 845–854. 10. Van Der Spoel D. et al. GROMACS: Fast, flexible, and free // Journal of Computational Chemistry. Wiley Subscription Services, Inc., A Wiley Company, 2005. – Vol. 26, № 16. – P. 1701–1718. 11. Berendsen H.J.C., van der Spoel D., van Drunen R. GROMACS: A message-passing parallel molecular dynamics implementation // Comput. Phys. Commun. North-Holland, 1995. – Vol. 91, № 1–3. – P. 43–56. 12. Dewar M.J.S. et al. Development and use of quantum mechanical molecular models. 76. AM1: a new general purpose quantum mechanical molecular model // J. Am. Chem. Soc. American Chemical Society, 1985. – Vol. 107, № 13. – P. 3902–3909. 13. Yesylevskyy S.O. et al. Polarizable water model for the coarse-grained MARTINI force field // PLoS Comput. Biol. / ed. Levitt M. Public Library of Science, 2010. – Vol. 6, № 6. – P. 1–17. 14. Marrink S.J. et al. Perspective on the Martini model // Chem. Soc. Rev. The Royal Society of Chemistry, 2013. – Vol. 42, № 16. – P. 6801. 15. Bochicchio D., Monticelli L. Chapter Five – The Membrane Bending Modulus in Experiments and Simulations: A Puzzling Picture // Advances in Biomembranes and Lipid Self-Assembly, 2016. – Vol. 23. – Р. 117–143. 16. Эмануэль Н., Лясковская Ю. Торможение процессов окисления жиров, 1961.


205
17. Schaich K. Lipid oxidation: theoretical aspects // Bailey’s Ind. oil fat Prod., 2005. 18. Manzocco L., Panozzo A., Calligaris S. Accelerated Shelf Life Testing (ASLT) of Oils by Light and Temperature Exploitation // J. Am. Oil Chem. Soc. Springer-Verlag, 2012. – Vol. 89, № 4. – P. 577–583. 19. Lawless J.F. Statistical models and methods for lifetime data. Wiley-Interscience, 2003. – 630 p. 20. Huang Y., Kangas L.J., Rasco B. a. Applications of artificial neural networks (ANNs) in food science. // Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2007. – Vol. 47, № 2. – P. 113–126.
1. Тутельян В.А., Вялков А.И., Разумов А.Н. Научные основы здорового питания. Из-во: Панорама. Наука и практика. Москва, 2010. – 817 с. 2. Ambati R.R., Moi P.S., Ravi S., Aswathanarayana R.G. Astaxanthin: Sources, Extraction, Stability, Biological Activities and Its Commercial Applications-A Review // Mar. Drugs. – 2014. – № 12. – Р. 128–152. 3. Сиротин А.А., Дейнека В.И., Сиротина С.С. Разработка элементов технологии возделывания и исследование этапов органогенеза адониса летнего (adonis aestivalis l.) как источника астаксантина. // Научные ведомости, 2009. – № 11 (66), – С. 30–39. 4. Пат. 87245 Украина, МПК A01G 33/00, C12R 1/89, C12N 1/12. Способ культивирования одноклеточной зеленой водоросли Haematococcus pluvialis для получения астаксантина/ Минюк Г.С., Терентьева Н.В., Дробецкая И.В., Чубчикова И.Н.; заявители и патентообладатели: Минюк Г.С., Терентьева Н.В., Дробецкая И.В., Чубчикова И.Н. – №а200806137; заявл. 12.05.2008; опуб. 25.06.2009, Бюл. № 12.


232
5. Boussiba S. Carotenogenesis in the green alga Haematococcus pluvialis: Cellular physiology and stress response // Physiol. Plant. – 2000. – 108. – P. 111–11. 6. Del Rio Ε., Acien F.G., Garcia-Malea M.C., Rivas J., Molina- Grima E., Guerrero M.G. Efficient one-step production of astaxanthin by the microalga Haematococcus pluvialis in continuous culture // Biotechnol. Bioeng. – 2005. – 91, №. 7. – P. 808–815. 7. Заявка на изобретение 2011110739 Российская Федерация, МПК С12М 1/00. Способ культивирования клеток дрожжей phaffia rhodozyma для получения белково-витаминной добавки, содержащей каротиноид астаксантин/ Герман Л.С., Вустин М.М., Жаворонков В.А., Захаров З.В., Каменев Е.А., заявитель ООО «ФБТ». – № 2011110739/10; заявл. 22.03.11; опубл. 27.09.2012, Бюл. № 27. 8. Сиротин А.А., Сиротина С.С. Разработка технологии выращивания адониса летнего (Adonis aestivalis l.) в качестве источника астаксантина // Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественныенауки. – 2008. – Т.7, № 7. – с. 44–49. 9. Guerin M., Huntley M.E., Olaizola M. Heamatococcus astaxanthin: Applications for human h.ealth and nutrition. // Trends Biotechnol. 2003; 21: 210–216. 10. Higuera-Ciapara I., Felix-Valenzuela L., Goycoolea F.M. Astaxanthin: A review of its chemistry and applications. // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2006; 46: 185–196 55. 11. Naguib, Y.M.A. Antioxidant activities of astaxanthin and related carotenoids // J. Agric. Food Chem. – 2000 – № 48. – Р. 1150–1154. 12. Ambati R.R.; Raghunath R.L.; Baskaran V.; Ravi S.; Aswathanarayana R.G. Characterization of microalgal carotenoids by mass spectrometry and their bioavailability and antioxidant properties elucidated in rat model // J. Agric. Food Chem. – 2010. – № 58. – Р. 8553–8559.


233
13. Ambati R.R.; Baskaran V.; Ravi S.; Aswathanarayana R.G. In vivo bioavailability and antioxidant activity of carotenoids from micro algal biomass-A repeated dose study // Food Res. Int. – 2013. – № 54. – Р. 711–717. 14. Ambati R.R.; Raghunath R.L.; Baskaran V.; Ravi S.; Aswathanarayana R.G. Characterization of microalgal carotenoids by mass spectrometry and their bioavailability and antioxidant properties elucidated in rat model // J. Agric. Food Chem. – 2010. – № 58. – Р. 8553–8559. 15. Kamath, B.S.; Srikanta, B.M.; Dharmesh, S.M.; Sarada, R.; Ravishankar, G.A. Ulcer preventive and antioxidative properties of astaxanthin from Haematococcus pluvialis // Eur. J. Pharmacol. – 2008. – № 590. – Р. 387–395. 16. Leite MF, Lima AM, MassuyamaMM, Otton R. Astaxanthin restores the enzymatic antioxidant profile in salivary gland of alloxaninduced diabetic rats // ArchOralBiokl. – 2010. – № 55(7). – Р. 479–85. 17. Chan K.C., Pen P.J., Yin M.C. Anticoagulatory and antiinflammatory effects of astaxanthin in diabetic rats // J Food Sci. – 2012. – № 77. – Р. 76–80. 18. Nakano, M.; Onodera, A.; Saito, E.; Tanabe, M.; Yajima, K.; Takahashi, J.; Nguyen, V.C. Effect of astaxanthin in combination with αtocopherol or ascorbic acid against oxidative damage in diabetic ODS rats // J. Nutr. Sci. Vitaminol. – 2008. – № 54. – Р. 329–334. 19. Nakano M, Orimo N, Katagiri N, Tsubata M, Takahashi J, Van Chuyen N Inhibitory effect of astaxanthin combined with Flavangenol on oxidative stress biomarkers in streptozotocin-induced diabetic rats // Int J Vitam Nutr Res. – 2008. – № 78(4-5). – Р. 17–82. 20. Khan S.K.; Malinski T.; Mason R.P.; Kubant R.; Jacob R.F.; Fujioka K.; Denstaedt S.J.; King T.J.; Jackson H.L.; Hieber A.D.; et al.


234
Novel astaxanthin prodrug (CDX-085) attenuates thrombosis in a mouse model // Thromb. Res. – 2010. – № 126. – Р. 299–305. 21. Naguib Y.M.A. Antioxidant activities of astaxanthin and related carotenoids // J. Agric. Food Chem. – 2000 – № 48. – Р. 1150–1154. 22. Ishiki M, Nishida Y, Ishibashi H, Wada T, Fujisaka S, Takikawa A, Urakaze M, Sasaoka T, Usui I, Tobe K // Impact of divergent effects of astaxanthin on insulin signaling in L6 cells. – Endocrinology. – 2013. – № 154(8). – Р. 2600–2612. 23. Jyonouchi, H.; Zhang, L.; Gross, M.; Tomita, Y. Immunomodulating actions of carotenoids: Enhancement of in vivo and in vitro antibody production to T-dependent antigens // Nutr. Cancer. – 1994. – № 21. – Р. 47–58. 24. Park C.H.; Xu F.H.; Roh S.S.; Song Y.O.; Uebaba K.; Noh J.S.; Yokozawa T. Astaxanthin and Corni Fructus protect against diabetes-induced oxidative stress, inflammation and advanced glycation end product in livers of streptozotocin-induced diabetic rats // J Med Food. – 2015. – № 8. – Р. 1–8. 25. Otton R.; Marin, D.P.; Bolin A.P.; Santos R.C.; Polotow T.G.; Sampaio, S.C.; De Barros, M.P. Astaxanthin ameliorates the redox imbalance in lymphocytes of experimental diabetic rats // Chem. Biol. Interact. – 2010. – № 186. – Р. 306–315. 26. Bhuvaneswari S.; Arunkumar E.; Viswanathan P.; Anuradha C.V. Astaxanthin restricts weight gain, promotes insulin sensitivity and curtails fatty liver disease in mice fed an obesity-promoting diet // Process Biochem. – 2010. – № 45. – Р. 1406–1414. 27. Dong L.Y., Jin J, Lu G., Kang X.L. Astaxanthin attenuates the apoptosis of retinal ganglion cells in db/db mice by inhibition of oxidative stress // Mar Drugs. – 2013. – № 11. – Р. 960–974.Uchiyama K.; Naito Y.; Hasegawa G.; Nakamura N.; Taka-hashi J.; Yoshikawa T. Astaxan


235
thin protects β-cells against glucose toxicity in diabetic db/db mice // Redox Rep. – 2002. – № 7. – Р. 290–293. 28. Kim Y.J.; Kim Y.A.; Yokozawa T. Protection against oxidative stress, inflammation, and apoptosis of high glucose- exposed proximal tubular epithelial cells by astaxanthin // J. Agric. Food Chem. – 2009.– № 57. – Р. 8793–8797. 29. Manabe E.; Handa O.; Naito Y.; Mizushima K.; Akagiri S.; Adachi S.; Takagi T.; Kokura S.; Maoka T.; Yoshikawa T. Astaxanthin protects mesangial cells from hyperglycemia induced oxidative signaling // J. Cell Biochem. – 2008. – № 103. – Р. 1925–1937. 30. Yoshida H.; Yanai H.; Ito K.; Tomono Y.; Koikeda T.; Tsukahara H.; Tada N. Administration of natural astaxanthin increases serum HDL-cholesterol and adiponectin in subjects with mild hyperlipidemia // Atherosclerosis. – 2010. – № 209. – Р. 520–523. 31. Ishiki M, Nishida Y, Ishibashi H, Wada T, Fujisaka S, Takikawa A, Urakaze M, Sasaoka T, Usui I, Tobe K // Impact of divergent effects of astaxanthin on insulin signaling in L6 cells. – Endocrinology. – 2013. – № 154(8). – Р. 2600–2612. 32. Liu P.H., Aoi W., Takami M., Terajima H., Tanimura Y., Naito Y., Itoh Y., Yoshikawa T. The astaxanthin-induced improvement in lipid metabolism during exercise is mediated by a PGC-1α increase in skeletal muscle. // J Clin Biochem Nutr. – 2014. – № 54(2). – Р. 86–9. 33. Chen D., Wang H., Li L., Zhang C., Liu C. Alleviative effect of natural astaxanthin on physical fatigue // China Journal of Modern Medicine. – 2010. – № 17. 34. Ikeuchi M., Koyama T., Takahashi J., Yazawa K. Effects of Astaxanthin Supplementation on Exercise-Induced Fatigue in Mice // Biol. Pharm. Bull. – 2006. – № 29(10). – р. 2106–2110. 35. Polotow T.G., Vardaris C.V., Mihaliuc A.R., Gonçalves M.S., Pereira B., Ganini D., Barros M.P. Astaxanthin Supplementation Delays


236
Physical Exhaustion and Prevents Redox Imbalances in Plasma and Soleus Muscles of Wistar Rats // Nutrients. – 2014. – № 6. – Р. 5819–5838. 36. Djordjevic B., Baralic I., Kotur-Stevuljevic J., Stefanovic A., Ivanisevic J., Radivojevic N., Andjelkovic M., Dikic N. Effect of astaxanthin supplementation on muscle damage and oxidative stress markers in elite young soccer players // J Sports Med Phys Fitness. – 2012. – № 52. – Р. 382–92. 37. Curt L. Malmsten, Åke Lignell Dietary Supplementation with Astaxanthin-Rich Algal Meal Improves Strength Endurance – A Double Blind Placebo Controlled Study on Male Students // Carotenoid Science. – 2008. – Vol.13. – Р. 20–22. 38. Nishioka Y., Oyagi A., Tsuruma K., Shimazawa M., Ishibashi T., Hara H. The antianxiety-like effect of astaxanthin extracted from Paracoccus carotinifaciens // International union of biochemistry and molecular biology, Inc.. – 2011. – V.37 № 1. – Р. 25–30. 39. Mehani R, Yadav V.K., Sankadia R. Anxiolytic potential of astaxanthin on experimental animal model // International Journal of Basic & Clinical Pharmacology. – 2016. – V.5, № 1. – Р. 131–134. 40. Mehani R., Yadav V.K. Effect of astaxanthin in animal models of anxiety and depression // Int J Pharm Bio Sci. – 2014. – № 5(2). – Р. 12–18. 41. Wibrand K., Berge K., Messaoudi M., Duffaud A., Panja D., Bramham C.R., Burri L. Enhanced cognitive function and antidepressantlike effects after krill oil supplementation in rats // Lipids in Health and Disease. – 2013. – № 12(6). – URL: http://lipidworld.biomedcentral. com.sci-hub.io/articles/10.1186/1476-511X-12-6. 42. Barros M.P., Marin D.P., Bolin A.P., Macedo R.C.S., Campoio T.R., Fineto C. Jr., Guerra B.A., Polotow T.G., Vardaris C., Mattei R., Otton R. Combined astaxanthin and fish oil supplementation


237
improves glutathione-based redox balance in rat plasma and neutrophils // Chemico-Biological Interactions. – 2012. – № 97. – Р. 58–67. 43. Saw C.L.L., Yang A.Y., Guo Y., Kong A.N.T. Astaxanthin and omega-3 fatty acids individually and in combination protect against oxidative stress via the Nrf2–ARE pathway // Food and Chemical Toxicology. – 2013. – № 62. – Р. 869–875. 44. Otton R., Marin D.P., Bolin A.P., Santos Macedo R.C., Campoio T.R., Fineto C. Jr., Guerra B.A., Leite J.R., Barros M.P., Mattei R. Combined fish oil and astaxanthin supplementation modulates rat lymphocyte function / Eur J Nutr . – 2012. – № 51. – Р.707–718. 45. Brownell K.D. Weight regulation practices in athletes: analyse of metabolic and health effects / K.D. Brownell, S. Nelson-Steen, J.H. Wilmore // Med. Sci. Sports. Exer, 1987. – V.18. – Р.546–556. 46. Кристин, А. Розенблюм. Питание спортсменов: Руководство для профессиональной работы с физически подготовленными людьми / Под ред. КристинА. Розенблюм. – 3-еизд.-Киев: Олимпийскаялитература, 2006. – 536 с. 47. Davis P.F., Ozias M.K., Carlson S.E., Reed G. A., Winter M. K., McCarson K.E., Levant B. Dopamine receptor alterations in female rats with diet-induced decreased brain docosahexaenoic acid (DHA): interactions with reproductive status // Nutr Neurosci. 2010; 13(4): 161–169. 48. Rapoport S.I., Igarashi M. can the rat liver maintain normal brain DHA metabolism in the absence of dietary DHA? // Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2009. – 81(2–3). – Р. 119–123. 49. McNamara R.K., Sullivan J, Richtand NM. Omega-3 fatty acid deficiency augments amphetamine-induced behavioral sensitization in adult mice: prevention by chronic lithium treatment // J Psychiatr Res. 2008; 42(6): 458–468. 50. Levant B., Ozias M.K., Davis P.F., Winter M., Russell K.L., Carlson S.E., Reed G.A., McCarson K.E. Decreased brain docosahex


238
aenoic acid content produces neurobiological effects associated with depression: interactions with reproductive status in female rats // Psychoneuroendocrinology. 2008 33(9): 1279–1292. 51. Martins D. A., Custódio L., Barreira L., Pereira H., BenHamadou R., Varela J., Abu-Salah K. M. Alternative Sources of n-3 Long-Chain Polyunsaturated Fatty Acids in Marine Microalgae // Mar Drugs. 2013; 11(7): 2259–2281. 52. Кравченко Л. В., Морозов С. В. Антиоксидантный статус крыс, получавших разное количество ликопина // Бюллетень эксп. биологии и медицины – 2003. – Т. 135, № 4. – С. 414–418. 53. Arruda S.F., Siqueira E.M., de Valência F.F. Vitamin A deficiency increases hepcidin expression and oxidative stress in rat // Nutrition. – 2009. – Vol.25, № 4. –Р. 472–478., 55, Ravi Kumar S., Narayan B., Vallikannan B. // Eur. J. Nutr. – 2008. – Vol. 47, № 8. –Р. 432–441. 54. Chiu H.J., Fischman D.A, Hammerling U. Vitamin A depletion causes oxidative stress, mitochondrial dysfunction, and PARP-1dependent energy deprivation // FASEB J. – 2008. – Vol. 22, № 11. – Р. 3878–3887. 55. Yamaoka S., Kim H.S, Ogihara T., et al. Severe vitamin e deficiency exacerbates acute hyperoxic lung injury associated with increased oxidative stress and inflammation // Free Radic. Res. – 2008. – Vol. 42, № 6. – Р.602–612. 56. Yoshida Y., Itoh N., Hayakawa M., et al. The role of alphatocopherol in motor hypofunction with aging in alpha-tocopherol transfer protein knockout mice as assessed by oxidative stress biomarkers./ J. Nutr. Biochem. – 2010. – Vol.21, № 1. – Р. 66–76. 57. Zhang Q., Yang G., Li W., et al. Thiamine deficiency increases β-secretase activity and accumulation of β-amyloid peptides // Neurobiol. Aging. – 2011. – Vol.32, № 1. – Р. 42–53.


239
58. Keles M., Al B., Gumustekin K., Demircan B., et al. Antioxidative status and lipid peroxidation in kidney tissue of rats fed with vitamin B6-deficient diet // Ren. Fail.– 2010. – Vol. 32, № 5. – Р. 618–622. 59. Коденцова В.М., Вржесинская О.А., Бекетова Н.А. и др. Биохимические показатели плазмы крови и некоторые параметры антиоксидантого статуса крыс при полигиповитаминозах разной степени // Бюллетень эксп. биологии и медицины. – 2012. – № 10. – С. 439–442. 60. Paul M.V., Abhilash M., Varghese M.V., Alex M., et al. Protective effects of alpha-tocopherol against oxidative stress related to nephrotoxicity by monosodium glutamate in rats // Toxicol. Mech. Methods.– 2012. – Vol. 22, № 8. – Р. 625–630. 61. Jolitha A.B., Subramanyam M.V., Asha Devi S. Modification by vitamin E and exercise of oxidative stress in regions of aging rat brain: studies on superoxide dismutase isoenzymes and protein oxidation status // Exp. Gerontol. – 2006. – Vol. 41, № 8. – Р. 753–63. 62. Kobayashi N., Machida T., Takahashi T., et al. Elevation by oxidative stress and aging of hypothalamic-pituitary-adrenal activity in rats and its prevention by vitamin E // J. Clin. Biochem. Nutr. – 2009– Vol.;45, № 2. – Р. 207–213. 63. Jelodar G., Akbari A., Nazifi S. The Prophylactic Effect of Vitamin C on Oxidative Stress Indexes Following Exposure to Radio Frequency Wave Generated by a BTS Antenna Model in Rat Liver and Kidney // Int. J. Radiat. Biol. – 2013. – Vol.89, № 2. – Р.128–131. 64. Moretti M., Budni J., Dos Santos D.B., et al. Protective effects of ascorbic acid on behavior and oxidative status of restraint-stressed mice // J Mol. Neurosci. – 2013. – Vol.49, № 1. – Р.68–79. 65. Devi S.A, Vani R, Subramanyam M.V, et al. Intermittent hypobaric hypoxia-induced oxidative stress in rat erythrocytes: protective


240
effects of vitamin E, vitamin C, and carnitine // Cell Biochem. Funct. – 2007. – Vol. 25, № 2. – Р.221–231. 66. Zaidi S.M., Al-Qirim T.M., Banu N. Modulation of restraint stress induced oxidative changes in rats by antioxidant vitamins // Drugs R D. – 2005. – Vol. 6, № 3. – Р. 157–165. 67. Коденцова В.М., Вржесинская О.А., Никитюк Д.Б. Витамины в питании спортсменов // Вопр. питания. – 2009. – Т.78, № 3. – С. 60–75. 68. Коденцова В.М., Вржесинская О.А. Пищевые продукты, обогащенные витаминами и минеральными веществами: их роль в обеспечении организма микронутриентами // Вопр. Питания. – 2008. – Т. 77. – № 4. – С. 16–25. 69. Ашихмин И.А. Влияние приема «Компливита» на физическую работоспособность спортсменов-тяжелоатлетов // Журнал РАСМИРБИ. – 2006. – № 3. – с. 11. 70. Tsakiris S., Parthimos T., Tsakiris T., et al. Alpha-tocopherol supplementation reduces the elevated 8-hydroxy-2-deoxyguanosine blood levels induced by training in basketball players. // Clin. Chem. Lab. Med.- 2006. – Vol. 44, № 8. – Р. 1004–1008. 71. Tsakiris S., Karikas G.A., Parthimos T., et al. Alphatocopherol supplementation prevents the exercise-induced reduction of serum paraoxonase 1/arylesterase activities in healthy individuals // Eur. J. Clin. Nutr. – 2009. – Vol. 63, № 2. –Р. 215–221. 72. Sureda A., Batle J.M., Tauler P. et al. Vitamin C supplementation influences the antioxidant response and nitric oxide handling of erythrocytes and lymphocytes to diving apnea // Free Radic. Biol. Med.- 2004.- Vol. 37, № 11.- Р. 1744-1755. Sureda A., Batle J.M., Tauler P. et al. // Eur. J. Clin. Nutr. – 2006. – Vol. 60, № 7. –Р. 838–846. 73. Бекетова Н.А., Вржесинская О.А., Коденцова В.М. и др. Коррекция полигиповитаминоза у крыс различными дозами витами


241
нов на фоне обогащения рациона полиненасыщенными жирными кислотами семейства ω-3 // Вопр. питания. – 2013. – Т. 82, № 4. – С. 39–47. 74. Вржесинская О.А., Бекетова Н.А., Коденцова В.М., Переверзева О.Г., Кошелева О.В., Сокольников А.А., Кулакова С.Н., Батурина В.А., Сото С.Х. Влияние обогащения витаминдефицитного рациона крыс полиненасыщенными жирными кислотами семейства ω-3 на биомаркеры витаминного и антиоксидантного статуса // Вопр. питания. – 2013. – Т. 82, № 1. – С. 45–52. 75. Сергутина А.В., Герштейн Л.М. Влияние L-ДОФА на мозг в зависимости от индивидуальных особенностей поведения // Журнал неврологии и психиатрии. – 2014. – № 12. – С. 56–59. 76. Martins D. A., Custódio L., Barreira L., Pereira H., BenHamadou R., Varela J., Abu-Salah K. M. Alternative Sources of n-3 Long-Chain Polyunsaturated Fatty Acids in Marine Microalgae // Mar Drugs. 2013; 11(7): 2259–2281. 77. Mattei R., Polotow T.G., Vardaris C.V., Guerra B.A., Leite J.R., Otton R., Barros M.P. Astaxanthin limits fish oil-related oxidative insult in the anterior forebrain of Wistar rats: Putative anxiolytic effects? // Pharmacol. Biochem. Behav. 2011; 99: 349–355. 78. McNamara R.K., Sullivan J, Richtand NM. Omega-3 fatty acid deficiency augments amphetamine-induced behavioral sensitization in adult mice: prevention by chronic lithium treatment // J Psychiatr Res. 2008; 42(6): 458–468. 79. Barros M.P., Poppe S.C., Souza-Junior T.P. Putative benefits of microalgal astaxanthin on exercise and human health. // Braz. J. Pharmacognos. 2011; 21: 283–289.
Тутельян В.А., Спиричев В.Б., Суханов Б.П., Кудашева В.А. Микронутриенты в питании здорового и больного человека (справочное руководство по витаминам и минеральным веществам). – М.: Колос, 2002. – 424 с. 2. Шабров А.В., Дадали В.А., Макаров В.Г. Биохимические основы действия микрокомпонентов пищи/под ред. В.А. Дадали. – М.: Авалон, 2003. – 184 с. 3. Оттавей П.Б. Обогащение пищевых продуктов и биологически активные добавки. Технология, безопасность и нормативная база. / П.Б. Оттавей; пер.с англ. – СПб: Профессия, 2010. – 312 с. 4. Пальцев М.А. Персонифицированная медицина // Наука в России. – 2011. – № 1. – С. 12–17. 5. Батурин А.К., Сорокина Е.Ю., Погожева А.В., Тутельян В.А. Генетические подходы к персонализации питания // Вопросы питания. – 2012. – № 6. – С. 4–11. 6. Вискунова А.А., Каганов Б.С., Шарафетдинов Х.Х., Плотникова О.А. Роль алиментарного фактора в коррекции основных проявлений метаболического синдрома. Современного подходы к диетотерапии // Вопросы питания. – 2009. – № 5. – С. 4–10. 7. Верескун Н.В. Лечебное питание при гипертонии / Н.В. Верескун – Москва: РИПОЛ классик, 2011 – 191 с. 8. Питание здорового и больного ребенка / ред. В.А. Тутельян [и др.] – 4-е изд. – М: Династия, 2010. – 315 с. 9. Diplock AT, Aggett PJ, Ashwell M, Bornet F, Fern EB & Roberfroid MB (1999) Scientific concepts of functional foods in Europe: consensus document. // British Journal of Nutrition 81, Supp. 1, S1 – S27. 10. Анисимова А.В., Михайлов Н.А., Бедных Б.С., Бушуева И.Г. Проектирование состава продуктов детского питания: Обзорная


254
информация. – М.: АгроНИИТЭИММП, 1995. – 35 с. 11. Грачёв Ю. П. Математические методы планирования эксперимента. – М.: Пищевая промышленность, 1979. . 200 с. 12. Остроумов Л. А., Бобылин В. В., Остроумова Т. А., Брагинский В. И., Вождаева Л. И. Комбинированные молочные белковые продукты с использованием растительного сырья // Хранение и переработка сельхозсырья, 1998. № 8. – С. 28–30. 13. Шатнюк Л.Н., Воробьёва И.С., Воробьёва В.М., Байков В.Г., Суворов И.В. – Изменение липидного комплекса обогащенной пшеничной муки в процессе хранения // Хлебопечение России – 2010 – № 2 – С. 29–31. 14. Смолянский Б.Л. Терминологическая трактовка и классификация алиментарных заболеваний // Вопр. питания. – 1989. – № 5. – С. 23–27. 15. Lopez C. Estimated intelligence quotient in anorexia nervosa: a systematic review and meta-analysis of the literature / C. Lopez, D. Stahl, K. Tchanturia // Annals of General Psychiatry, 2010. – Vol. 9. – P. 40–49. 16. Лаптева Е.Н. Особенности лечебного питания больных с алиментарной дистрофией (белково-энергетической недостаточностью алиментарного генеза) // Вопросы здорового и диетического питания. – 2011. – № 4. – C. 4–15. 17. Зайнудинов З.М. и др. Современные продукты питания в программах диетологической реабилитации пациентов с различными формами нарушений пищевого поведения // Материалы XI Всероссийского Конгресса диетологов и нутрициологов. – М., 2009. – С. 50. 18. Хорошилов И.Е. Кахексия и истощение: патогенез, диагностика и лечение // Клиническое питание. – 2007. – № 3. – С. 51–54. 19. Рогов И.А., Жаринов А.И., Воякин М.П. – Химия пищи. Принципы формирования качества мясопродуктов – СПб.: Издательство РАПП, 2008. – 340 с.

Страница обновлена: 07.10.2021 в 06:12:30